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従来のペプチド免疫療法の問題点 樹状細胞 CTL CTL CTL CTL CTL CTL CTL CTL 腫瘍組織 腫瘍細胞を殺す 細胞傷害性 T 細胞 (CTL) の大半は 腫瘍の存在に気づかず 血管内を通り過ぎている! 腫瘍抗原の提示を考えると それは当然! 2

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Academic year: 2021

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(1)

1

In vivo抗腫瘍活性の高い

Th/CTL誘導法の開発

高知大学・医・免疫

(2)

CTL

CTL

CTL

CTL

腫瘍組織

樹状細胞

CTL

CTL

CTL

CTL

腫瘍細胞を殺す、細胞傷害性T細胞(CTL)の大半は、 腫瘍の存在に気づかず、血管内を通り過ぎている!

腫瘍抗原の提示を考えると、それは当然!

従来のペプチド免疫療法の問題点

(3)

3

因性抗原の提示経路

樹状細胞(DC) B 細胞 ”血管内皮細胞?”

因性抗原の提示経路

がん細胞 ウイルス感染細胞

CTL

Th

キラーT細胞

ヘルパーT細胞

(4)

腫瘍が縮小する場には、

CD4 T(Th)が浸潤

DCが提示した抗原を認識し、Thが IFN-γを分泌 →CTLがケモカイン依存性に腫瘍内へ浸潤 腫瘍細胞を 貪食したEC Th

樹状細胞

DC

死んだ

腫瘍細胞

CTL CTL Th

Th 腫瘍内に浸潤したTh細胞

我々が見つけたこと

(5)

5

腫瘍血管ECには、HLA class II 分子の発現がみられる in the EL4 tumor

anti-von Willebrand factor anti-I-Ad merged, DAPI

anti-CD11c anti-I-Ad merged, DAPI for nuclei

EC

(6)

Th CTL 固形腫瘍 Th 骨髄由来 DC 骨髄キメラ (MHC class II- 欠損マウス 正常マウス) キメラ 1 キメラ 2 血管内皮細胞 : MHC-II + -樹状細胞 (DC) 骨髄由来 : - + キメラ 1 キメラ 2

(7)

7 腫瘍内へ浸潤した DO11.10 の数 0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 CBF1 KO KO→F1 F1→KO 宿主のマウス 平均細胞数/1 0 視 野 EL4 E.G7-OVA n=4 n=3 n=3 n=3 Spleen 内に侵入したDO11.10の数 0 100 200 300 400 500 600 700 800 900 1000 CBF1 KO KO→CBF1 CBF1→KO 宿主マウス 平均細胞数/1 0 視 野 DC:MHC-II- 血管内皮細胞:MHC-II -↓ ↓ Thの腫瘍内浸潤 には、 血管内皮細胞・ 樹状細胞 による抗原提示が 両方とも必要 1切片20視野 x10切片に 浸潤したTh細胞 の総数

(8)

EL4:腫瘍特異抗原が出ていない腫瘍 EG7:腫瘍特異抗原を出している腫瘍

腫瘍特異的Th細胞が腫瘍内に浸潤した結果、

腫瘍血管内皮細胞

CTLを呼び込む走化性因子 I-TAC

(9)

9 EL4 EG7 0 50 100 150 200 250 300 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu mor s iz e (mm 2)

days after tumor inoculation

PBS 0 50 100 150 200 250 300 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu mo rs iz e (mm 2)

days after tumor inoculation

OVAI 0 50 100 150 200 250 300 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu m o rs iz e (m m 2)

days after tumor inoculation

OVAI+ 0 50 100 150 200 250 300 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu m o rs iz e (m m 2)

days after tumor inoculation

OVAI+OVAII 0 100 200 300 400 500 600 700 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu mo rs iz e (mm 2)

days after tumor inoculation

PBS 0 100 200 300 400 500 600 700 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu mo rs iz e (mm 2)

days after tumor inoculation

OVAI 0 100 200 300 400 500 600 700 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu m o rs iz e (m m 2)

days after tumor inoculation

OVAI+ 0 100 200 300 400 500 600 700 4 6 8 10 12 14 16 18 20 tu m o rs iz e (m m 2)

days after tumor inoculation

OVAI+OVAII in vivo ペプチド免疫 ↓ 腫瘍接種

PBS

CTL

CTL+

第3者抗原 特異的

Th

CTL+

腫瘍抗原 特異的

Th

腫瘍接種

EG7: 腫瘍抗原 としてOVA を発現する EL4 tumor CTL; OVA-I Th: OVA-II あるいは  peptide

(10)

ヘルパーT細胞誘導型ワクチンの開発

ー MHC class II 分子結合性ペプチドのデザイン ー

 抗原提示細胞の膜会合性peptidaseに対する消化耐

性を付与する末端修飾をペプチドに導入

→生きた抗原提示細胞へのペプチド結合能を測定

 HLA-DRB1*04:05結合性ペプチド自動予測法の開発

(11)

11

抗原提示細胞

樹状細胞 B細胞 血管内皮細胞?

MHC class II

MHC class II 分子に対する定量的競合結合実験 非標識ペプチドが速やかに分解され、競合結合実験は困難 ↓ そこで、測定したいペプチドの末端に、消化耐性を付与する修飾 を加えた PE-streptavidin Biotin-標識ペプチド

(12)

Competitive binding assay

at pH6.0

at pH7.4

‐1 ‐0.5 0 0.5 1 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 lo (y /1 ‐y) log peptide concenteration (M) TR175 ‐1 ‐0.5 0 0.5 1 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 lo (y /1 ‐y) log peptide concenteration (M) T175 ‐1 ‐0.5 0 0.5 1 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 lo (y /1 ‐y) log peptide concenteration (M) TR175 ‐1 ‐0.5 0 0.5 1 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 lo (y /1 ‐y) log peptide concenteration (M) T175

・・・・・・・・・・・ ・・・・・・・・・・・ no staining PE-SA alone

100M competitor 50 M 25 M 12.5M 6.25 M 3.13 M 1.57 M 末端修飾ペプチド 未修飾ペプチド

(13)

13 ‐1.5 ‐1 ‐0.5 0 0.5 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 TR175 0 0.5 1 1.5 2 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 HS39 ‐1.5 ‐1 ‐0.5 0 0.5 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 M1082 ‐1 ‐0.5 0 0.5 1 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 M119 ‐0.4 ‐0.2 0 0.2 0.4 0.6 0.8 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 M1044 0 0.2 0.4 0.6 0.8 -6.00 -5.50 -5.00 -4.50 -4.00 De60 任意のアミノ酸配列の ペプチドについて、 HLA-DRB1*04:05 への結合競合活性を log IC50 値 として定量測定できる ようになった ↓ HLA-DRB1*04:05 結合性ペプチドの 自動予測法を開発 NIH IEDB の予測サイト を大きく上回る予想能 を達成! Peptide 1 Peptide 2 Peptide 3 Peptide 4 Peptide 5

(14)

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 5 0.5 0.05 0 CD6 9 + am o n g K J1. 26 + CD4 + c e lls (% ) peptide concentration (μM) PbOVIIbPβ POVIIPβ OVII Wc alone PBS foot pad immunization ↓ Lymph node cells を回収 ↓ CD69+ DO11.10 cells を解析

末端修飾をした MHC class II 結合性ペプチドを用いた、

in vivo Th cell 誘導実験

末端修飾1 末端修飾2 末端修飾なし アジュバントのみ

(15)

15

MHC class II 結合性ペプチドを用いて、in vivo Th 誘導をしたい

MPLA (a TLR-4 ligand)-Liposome にペプチドを封入 ↓

リンパ節の抗原提示細胞に集中して届けられないか?

1. OVA (I-Ad 結合性)のモデル抗原系で、

in vivo Th 誘導活性を比較した

tOVII : 末端修飾なしのOVA epitope peptide PtOVII : 末端保護(Protected-)ありのtOVII

2. 自然な腫瘍抗原ペプチドの実験系

WT1 腫瘍抗原由来のペプチドを同定し マウスを免疫した

(16)

0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 0.0 0.1 1.0 10.0 100.0 PtOVII in lipo

PtOVII with lipo

PtOVII

PBS in vivo : PtOVII in/with lipo

in vitro : tOVII 0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 0.0 0.1 1.0 10.0 100.0 tOVII in lipo

tOVII with lipo

tOVII

PBS

in vivo : tOVII in/with lipo in vitro : tOVII Pr olif er at ion  (cpm)

in vivo imm : tOVII in/w lipo.  in vitro : tOVII

in vivo imm : PtOVII in/w lipo.  in vitro : tOVII PBS tOVII tOVII w/ lipo. tOVII in lipo. PBS PtOVII PtOVII w/ lipo. PtOVII in lipo. 0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 0.0 0.1 1.0 10.0 100.0 PtOVII in lipo

PtOVII with lipo

PtOVII

PBS in vivo : PtOVII in/with lipo

in vitro : PtOVII 0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 tOVII in lipo

tOVII with lipo

tOVII

PBS

in vivo : tOVII in/with lipo in vitro : PtOVII Pr olif er at ion  (cpm)

Efficient induction of Th cells by using an end‐protected PtOVII peptide

in vivo imm : tOVII in/w lipo.  in vitro : PtOVII

in vivo imm : PtOVII in/w lipo.  in vitro : PtOVII PBS tOVII tOVII w/ lipo. tOVII in lipo. PBS PtOVII PtOVII w/ lipo. PtOVII in lipo.

(17)

17 0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 0.0 0.1 1.0 10.0 100.0 pr olif er at ion  (cp m ) concentration of peptide (M) Wh‐1.1 Wh‐1.2 PBS.1 PBS.2 a. Wh‐1 peptide 0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 0.0 0.1 1.0 10.0 100.0 pr olif er at ion  (cp m ) concentration of peptide (M) Wh‐2.1 Wh‐2.2 PBS.1 PBS.2 b. Wh‐2 peptide 0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 0.0 0.1 1.0 10.0 100.0 pr olif er at ion  (cp m ) concentration of peptide (M) Wh‐3.1 Wh‐3.2 PBS.1 PBS.2 c. Wh‐3 peptide

Induction of Th cells by liposome‐encapsulated WT1 peptides

In vivo immunization 1 2 3 In vitro proliferation C57BL/6 mice s.c. in foot pads

(18)

新技術の特徴・従来技術との比較

• CTLのみならず、腫瘍特異的Thを誘導することにより、

血管内から腫瘍組織へとT細胞を積極的に動員し、高

い抗腫瘍活性を引き出す免疫法を開発した。

• HLA class II 分子のペプチド結合特性を解析するた

め、ペプチドに抗原提示細胞の膜会合性ペプチダー

ゼに対する消化耐性を付与する修飾法を考案し、ペ

プチド結合能の定量測定を簡便にできるようにした。

• 消化耐性を付与する末端修飾を加えたペプチドを用

いて、in vivo におけるTh誘導効率を数百倍に高めた。

• MPLA liposomeにHLA結合性ペプチドを包むことに

より、in vivo T細胞誘導活性を高めた。

(19)

19

想定される用途

• 任意の悪性腫瘍に対して、

HLA class I および、HLA class II結合性の腫瘍

抗原ペプチドをそれぞれ同定して、高い抗腫瘍活

性をもつ免疫療法を開発することが可能。

• Thが認識するHLA class II 結合性ペプチドを予測・

同定し、腫瘍免疫のみならず、アレルギーや自己免

疫疾患の標的抗原を同定することができる。

(20)

実用化に向けた課題

• 任意の抗原タンパク質について、CTL、Thが

認識するHLA結合性ペプチドを同定する技術

まで開発済み。今後、より高いT細胞誘導効

率を実現するため、liposome製剤のデザイン

を至適化し、免疫する全個体でT細胞が誘導

できるよう、工夫が必要。

• In vivoで誘導した腫瘍抗原特異的T細胞の体

内での存続状況や活性化の程度をモニター

する方法の開発が必要。これは、世界でも共

通の懸案となっている。

(21)

21

企業への期待

• 世界で腫瘍腫ごとに免疫チェックポイント阻害

抗体製剤の導入が進んでいる。しかし、治療

に応答しない症例では、エフェクターとなるT

細胞が誘導されていないことが大きな課題と

なっている。それを補完すべく、腫瘍抗原特異

的T細胞を誘導する技術の開発を進めたい。

• Liposomeを含め、DDSの技術を持ち、臨床

試験に積極的な企業との共同研究が理想的。

• ペプチドワクチンを開発中の企業には、我々

のペプチド解析技術がお役に立つと思う。

(22)

本技術に関する知的財産権

• 発明の名称:ヘルパーT細胞誘導性ポリペプチドの改変

• 国際公開

:WO/2013/089252

• 出願人

:高知大学

• 発明者

:宇高 恵子

• 発明の名称:癌の治療剤

• 特許番号

:特許第5239041号(2013.4.12)

• 米国特許

:No.9,045,556(June 2,2015)

• 出願人

:阪大微生物病研究会、

日本電気株式会社、高知大学

• 発明者

:石橋 正英、宇高 恵子

(23)

23

産学連携の経歴

• 2003年-2006年 日本電気株式会社と共同研究

• 2007年-2009年 JST育成研究に採択

• 2010年

JST A-STEP(FS)に採択

• 2010年

大塚製薬株式会社と共同研究

• 2011年

JST A-STEP(FS)に採択

• 2012年-

日本電気株式会社と共同研究

• 2014年-2015年 JST A-STEP(FS)に採択

• 2014年-

アストリム株式会社と共同研究

(24)

お問い合わせ先

高知大学教育研究部医療学系

基礎医学部門(免疫学)

教授

宇高 恵子

TEL: 088-880-2317

FAX: 088-880-2320

E-mail: [email protected]

・高知大学地域連携推進センター

客員教授

藤本

茂 (コーディネーター)

E-mail: [email protected]

参照

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