• 検索結果がありません。

金属プロテアーゼの活性部位の構造 : 新奇な酵素活性部位を持つジペプチジルペプチダーゼⅢを中心に

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2021

シェア "金属プロテアーゼの活性部位の構造 : 新奇な酵素活性部位を持つジペプチジルペプチダーゼⅢを中心に"

Copied!
10
0
0

読み込み中.... (全文を見る)

全文

(1)

〔総説〕松本歯学32:11∼20,2006

      key words:metalloprotease 一 catalytic domain 一 dipeptidyl peptidase

金 属 プ ロ テ ア ー ゼ の 活 性 部 位 の 構 造 :

新奇な酵素活性部位を持つジペプチジルペプチダーゼIIIを中心に

深澤加與子

松本歯科大学 大学院 硬組織疾患制御再建学講座

Structure of catalytic domain of metalloprotease: mainly considering the novel motif identified oll DPP III

KAYOKO M FUKASAWA

Depαrtment ・fHαrd Tissue Reseα励Grα∂励e Scん・・1げOrα1ル励c漉,       Mαts醐吻De励/砺↓uers鋤

Summary

  Almos七metalloproteases con七ain a zinc atom in the active domain coordinating three amino acid residues on the protein and a single water molecule. Metalloproteases are clas− sified into several groups according to the amino acid sequence of the catalytic domain. Dipeptidyl peptidase(DPP)皿,which catalyzes the removal of ullsubstituted, N−terminal dipeptide伽m peptides andβ一naphthylamide derivatives, had beell classified as a serine protease until the amino acid sequence of DPP M was determined. The presence of a similar 且ELLGH motif on DPP M as the zinc metalloprotease mo七if HEXXH raises the possibility that DPP皿is a metalloprotease. By electrothermal a七〇mic absorp七ion spectrometry, DPP皿 was demonstrated to con七ain one mol of zinc per mol of protein, and on zinc−binding study, the dissociation constant(盈)of DPP皿was detected to be(2.5±0.5)×10−13 M. These findings show that DPP皿is a mono zinc metalloprotease. Furthermore, mutagenesis experiments confirmed tha七residues且is450, His455 and Glu451.on DPP M are involved in zinc coordination and catalytic activity, and七hat residue Glu508 is a third ligand of zinc atom. DPP皿has been newly classified as a metalloprotease containing a novel zinc−binding domain“HELLGH motif,. The three−dimensional structure of the cataly七ic domain and putative catalytic mechanism of DPP M are deduced from that of thermolysin proposed by Matthews alollg with these site−directed mutagenesis studies on DPP M. (2006年4月10日受理)

(2)

]2 深澤:Identification of novel zine binding motif on DPP III

はじめに

 ワトソンとクリックのDNA頑らせん構造の

発見は、今1」の急速な分子生物学の進展をもたら

し,多くの研究分野に影響を与えた.そのなかで

も生体高分子,特にタンパク質の・次構造決定は,

数1’年前は,純度の高いタンパク質の精製ならび

にPTH法によるアミノ酸配列の決定と,経験に

基づく高度な技術力と膨大なll芋問を要した,しか

しクローニング技術の導人により,タンパク質の

人手が劇的に容易になり,飛躍的な伸びでタンパ

ク質の一’次構造が決定されてきた.それと同時に,

X一線結晶解析や核磁1気共鳴スペクトル分析機器

類の進歩が伴い,タンパク質の高次構造が次々明

らかにされ,生理機能解明へと続き、生体の神秘

が解き明かされてきた.

 タンパク質分解酵素は,生体内タンパク質の恒

常性の保持,ホルモンレベルの調節などに関与す

るが,いまだ多くの酵素でその標的は不明である.

2004年に出版されたHand Book of Proteolytic

Enzymes第2版1.には662種の酵素が掲載され,

その触媒作川に関与・するアミノ酸残基に基づき,

アスパラギン酸酵素,セリンとスレオニン酵素,

システイン酵素ならびに金属酵素に分類されてい

る.

 本総説では、セリン酵素に分類されていたジペ

プチジルペプチダーゼ(DPP)田が新奇な活性中

心構造を持つ金属酵素であることが証明される過

程を述べ,最も多種類の酵素が同定されている金

属プロテアーゼの活性中心構造について総括し,

タンパク質の構造決定法ならびにその意義につい

て考察する.

金属プロテアーゼの活性中心構造

 金属プロテアーゼには,コバルトイオンあるい

はマンガンイオンを含むものが有る,しかし大多

数の金属酵素が活性中心に亜鉛イオン1原f“を含

んでいる.サーモライシジ,カルボキシペプチ

ダーゼA,B,1, ,,などのプロテアーゼやその他β

一ラクタマーゼ5,ホスホリパーゼC”,アルカリ

ホスファターゼ7などの亜鉛酵素のX一線結晶解

析により,窒素原子(ヒスチジン),酸素原r−(グ

ルタミン酸)あるいはイオウ原f(システイン)

のいずれか3∼4個の原子が亜鉛イオンと配位結

図1:Richardson diagram of snapalysin. The irnage was   prepared廿om the Brookhaven Protein Data Bank   entry(1KUHs]‘). The zinc ion is shown as a dark   gray sphere. Thp zinc Iigands are q. hown in ball−and   −stick:HisyL’〔red)、 His∼1「,{red}and Aspltド川pink).   The catalytic Glu94 is also shown ill ball−and−stick   〔blue}, ノ

へ6

  \

\へ

  @・of⑤ ・翌一’

⑤9/\

図2:Schematic of the mechanism fol’the activation of   the matrix prometalloproteinase.Activation occul’s   th「ough the conversion of the zillc coordinated to   fbur alnino acid residues 〔tetradentate)into one   that is coordinated to onlv three re9. idues{tridel1−   tatelthrough the removal ofone ligand, cysteine、 S,   which is then replaced by water, The small arrow   indicates the peptide region of the pres umable   autocatalytic clea, vage site. Histidine residue is   shoWIl H.

合していることが示されたs.Metzincinに属す

るSnapalysinの亜鉛結合部位の構造イメージ像

(図1)”・とプロコラゲナーゼの活性化機構の予想

模式図(図2)に示すようにs. pb‘.プロコラゲナー

ゼは,亜鉛イオンが3個の窒素原子と1個のイオ

ウ原子の4原子と配位結合している,これがシス

テインを含むN末端ペプチドが分解あるいは変

性することによりイオウの配位がはずれ,水分子

が第4の配位子として結合し,活性酵素となる.

 これまでに一一次構造が明らかにされてきた多く

(3)

Metarlloprotase

 Zincins

㎜一Xa−E

Gluzincin Metzincins 松本歯学 32・1)2006 InVerZinCinS 月斑一Xlo4131−H H−X42−HXH [[Xvo zinc ion Cobalt or Manganese ion Methionyl aminopeptidase   図3:Falnilies ofmetalloproteases. Themolysin family a=19 Endopeptidase£   a=19 Angiotesin converting enzyme f. a=23 Aminopeptidase f,  a=18

    HEXXHXXGXXHID−Xb−M

Astaxin£   b=45 Serratia£   b=28 Reprolysin£ b=13 Matrixin £  b=8  1㎜一X77’E  Insulinase£    Carboxypeptidase f,  DD−crboxypeptidase  Leucyl aminopeptidase

のデータを相同検索することで,その活性中心構

造の推測や不明な生理活性を予測するようになっ

てきた.工990年代には,金属結合部位と予想され

るアミノ酸配列に基づいて金属プロテアーゼは分

類されてきた11’IL”1「sト. Hooperii’の亜鉛メタロプロ

テアーゼの分類を修正し図3に示す.現在金属プ

ロテアーゼとして登録されているうちの65%は

HEXXHモチーフを持つZincinに属している.

ZincinはGluzincinとMetzillcinに分けられ,

アミノペプチダーゼ類が属しているGluzincinは

2個のヒスチジン残基ならびにC一末端側に18∼

58残基離れたグルタミン酸残基に亜鉛イオンが配

位している.マトリックスメタロプロテアーゼ類

が属しているMetzincinは3個のヒスチジン残

基(あるいは1個のヒスチジンがアスパラギン酸

と甦わりている)を含むHE㎜G㎜

13

モチーフが保存されている.その他、Zincin同

様,1個の亜鉛イオンを持つ,Inverzincinやカ

ルボキシペプチダーゼファミリーなどのモノジン

ク酵素,2個の亜鉛イオンを含むもの,コバルト

イオンやマグネシウムイオンを含むものなどに分

類される.

ジペプチジルペプチダーゼIH

 ジペプチジルペプチダーゼ(DPP)皿はペプチ

ドのアミノ末端からジペプチドを分離分解するエ

キソペプチダーゼのひとつで,1967年ウシ脳下垂

体前葉川から分離精製されて以来,ラット,ヒト

やブタなどの皮膚,脳,胎盤,赤血球,眼球や膵

臓など多くの組織から分離されその酵素化学的性

質が明らかにされてきたISm]7‘.生理活性ペプチド

を分解することからエンケファリナーゼ1R,あるい

は、アンジオテンシナーE’ IV、とも呼ばれている.

しかし阻害実験では金属酵素,システイン酵素な

らびにセリン酵素の阻害剤すべてに影響を受ける

(表1)ことから活性中心のアミノ酸は未定で

あったが、1992年にIUBMBの酵素命名部門で

セリン酵素に分類され,また1998年に発行された

Handbook of Proteolitic Enzymesの初版でもセ

リン酵素として掲載された.

DPP皿の一次構造の決定と金属酵素の証明

 我々は,DPPMがセリン酵素であることに疑

問を持ち,この酵素のクローニングを試みた.ま

ず活性の高いヒト胎盤から酵素を単一に精製し,

抗体を作成した.ラット肝臓から作成したcDNA

      表1:Effect ofinhibitors on enzyme activity Data indicate concentration for 50%inhibition of placental DPP皿. PCMPS,p−chloromercuriphenylsulphonic acid;NEM, N−ethylmaleimide;DCI, 3,4−dichloroisocoumarin;PMSF, phenylmethylsulphonyl fluoride

Enzyme activity Potential inhibitor Inhibitor concent「ation of50%inhibition(μM)

Metallopeptidase

Cysteine peptidase Serine peptidase o−Phenanthroline

EDTA

PCMPS

NEM

DCl

PMSF

240±16 298±11 3.30±0.24

6330±640

4.54±0.74

2170±470

(4)

14 深澤:Identification of nove1 zine binding motif on DPP皿

      C七gcagcag99C七C  −14

A鵬(}ILTACCCItGrA(瑚cer㏄C(迦丁(ll!CATC(紐GrGT(江恥㏄㎜(:TGC(蜘(mOXTTCOGC(㎜GT口」CC(聖㎜G 90

MADTQY工LPND工GVSSLDCREAFRL1」SPTE 30

C)GCCTCTAT(ICCCA1℃AC℃rGTCTAGiXGCICrmTAT(]GAGGC(㎜GTGCTGCTC(:AGACATCTC(:TGAAOCCCCeTA⊂瓢(コ虫丁180

RLYAHHLSRAAWYGGLAVI」LQTSPEAPY工Y 60

GCCCTG(コ晒㏄CGCCT(コTC()〔㎜CC蜘CCe]『GACCAG(:eA(文ヌご(:AAd(公TGC       GGGC(コPCIAer(孤GAAGA㏄AT(頂G  270

ALLSRLFRAQDPDQLRQHALAEGLTEEEYQ 90

GcATIrcC eec]T(TA      TC「[A(コ1(rm(:Ama(コrAmaGTCCTr[DCGCITGAC]AC(蛭GTCCCT触CCTGCC(ごiUtG  360

AFLVYAAGVYSNMGNYKSFGDTKFVPNLPK 120

GAAAAGCT〔)GA∞GTGTGATCC「『rGGGAGTAAGGCTGCC(願CAGCATC(XGmm(汲GGAGeeTT…GA   GCTT 450

EKLERV工LGSKAAQQHPEEVRSLWQTCG芭L ユ50

ATGTTC伐℃αコmmCCAAQGCrT(XYLCILT     GGIk(rmGTCnC〔叉CT賀TTTαr㎜TTGTGC(AT(鋼(謁丁540

MFSLEPRLRHLGLGKEGVTTYFSGDCAMED ユ80

GCCAAG(コ(拍ごC(]iUm(コrrCeTG(頚CT(コiCaGIVNeCTrC!Aa㎜TAcm(A(:(℃GG(一〕GTG(貫⊂㎜(〕G−C  630

AKI」AQDFLDSQNLSAYNTRLFKVVGQEGKY 210

㎝CT鮒GAGGTGCGA㎜⑳(rme1て:AIXCaCa(IAAmm(箪CTCTG鵠’⊥“⊥岨(コ烈℃CAA(͡(͡(㎜(℃ムG 720

HYEvRI.ASVINTEPALDS宮LTSKLKSYEFQ 240

GGG醜丁(IL rrr(℃AGGTCACCCG㎜(コCATCK C(X:(こATCC1正C℃AGABGG㎜G臨CA(−GCTAAGGcr−C 810

GNHFQVTRGDYAPエLQKVVEHLEKAKAYAA 270

AATAG((AC(浪GGA(]CAAATGCT(IGCCCAGTArm(IAamCC(公GGGTTC℃ATTG頑江CAT    Cα3CTTCTGG 900

NSHQEQMLAQY▽ESFTQGSIEAHKRGSRFW 300

ATT(]ACm(UUVrmCCC虫TTX]TA(迦(諭GTTACATTG㎜丁囎(㎜C⊂㎜CCCe㎜℃CCGAGGA(迎TTTG触GGC 990

エ__WDKGP工VESY工GF工ESY艮DPFGSRGEFEG 330

TrreGTGGC⊂ATGG工IVVXCAAAGrbe(ZltrGltGTmmGIEVC(話kGOGGCTGG ㎝(㎜G仙GGAGCT㏄CコrTGGC(コi 1080

FVAMVNKDMSAKFERLVASAEQLLKELPWP 36D

C㎝㏄㎜囎(蜘…㏄C嘔㎜㎝C㎝一C⑳C㎜㎝江C㎜TCC㎜㎜TC 1170

PAFEKDKFLTPDFTSLDVLTFAG$G工.PAG工 39Q

AA(IATCCC(IAAe工別TGATGAC㎝GAGA㎝(塾(当GA(mmAltGAItTGTGT(一田G−C(コrA7rX]CCa(ZAAAG 1260

NIPNYDDLRQTEGFKNVSLGNVLAVAYATK 420

m㎜GlgUlerencemenT〈]GIKIGAI GAILGAemGGAC−Cα㎜砲㏄eGTC⑳一㏄㎜蜘1350

R】3KLTFMEEEDKDbY工RWKGPSFD▽QVGLH 450

GAGCTGT工X]GGCCATGGCAeCGGC AAGCT(㎜A(ユGGATGAGAAAGG…CAA(コTTGAC(]ING(ヨA(翌LCAGTGATCAACCCAGAG 1440

ELLGHGSGKLFVQDEKGAFNFDQETV工NPE 480

A(燃GCAGATC(:公(IAGCTrGGTACe(迎(話GGAGAGA㎝㎜㎜AAτTTA(]CAJ(:丁工GCeTC(㎜丑(X蜘(込(YTGOCGG 1530

TGEQ工QSWYRSGETWDSKFST工ASSYEECR 510

GCTGAGAGCGTGGGCCTeT父CT⊂TGTC⊇CCCC(IAAGTA(㎜GATCTTTGGCTTT囎(コK. }ACGaAGAA〔頚TGTCATCTAT 1620

A宮SVGLYLCLNPQVLQXFGFEGTDAED▽工Y 540

G]7GAACTGGCTCAACATGGTCCGGG(−      GTTCTA(公CCC㎝GAGACGGC(MAmm己聖(mmαnmmG 1710

VNWLNMVRAGLLALEFYTPETANWRQAHMQ 570

GCC(㎜TGTGAT(㎜GGGTTTTGCTGGAAG(コ℃X3CG胸GGA(江(㎜CCGTCACCCC(]ACCA(汲GGe]:(コて訟TGGGOGCCCAGAT lSOe

ARFV工LRVLLEAGEGLVTVTPTTGSDGRPD 600

GCTCGTGT()Cl¥(㎜CCG⊂AGCAItGISLTC(XヨGTCAGTGG͡C   GCGGTTCCTCCGGEGA(rrGCAGGnmAGT⊂C 1.89Q

ARVHLDRSKIRSVGKPALERFLRRLQVI」KS 630

ACGG皿TTGeτGCG(llVLGGIUATCC(amATrGTCC為GCCCAACA(T(XrCCTGGAAGGCT己AGAAG㎜(コ㎜繊GT賀TGAG 2070

TVLLRKESRKI.工VQPNTRLEGSEVQLVEYE 690

GCCTCA㏄GGCTGGTCTCATC()GIXT(−IUACG]GTコ℃(XヨGAGGA㎜G為G㎜(]GlxGGT:rcT[cAcCatGcTG(yc en(込2160

ASAAGL工RSFCERFPEDGPELEE▽LTQiAT 720

GCAGATGCTC醜TTC]X蜘(3GGATCAGGTC(公(iGILOS⊂CC(公丁㎜(㎜TGAgaagatcしgtgtggca仁cヒccccttヒcat二caaa 2250

ADAQFWRDQVQEAPSGQA

ccag99Ctg仁CtgtggCCC七gaa仁tgヒ9ヒttaggaggtg999gaagggCaggagCヒCggac七ヒtg9ヒgctaCCtCaσctgag99tggtga 2340 ヒgctaaccc(:tヒccatt二tgtcageaetヒ七ccagt七taccatヒatgtcctcatヒヒcctggaヒcヒgcacヒgccatct⊆応ggtgggagcヒcaa 2430 cagggtgectagtctggtttヒccaaaヒgggaaggtggcagttc七gagaagtaactg七tc七agatecagcagg仁ggcatgtヨacagagcca 2520 gggcヒcaaagcaしtcヒcaecaaat二ccagtgctcttcgヒgtatしacctttta七agccagaaaaataaatatgacaaccaccaaaaaaaaaa 2610 aaaaaaaa      2618 図4:Nucleotide sequence of七he cDNA and the deduced amino acid sequence of DPP皿.Nucleotide residues are numbered   丘o皿5’to 3’, wi七h the first residue of the ATG codon encoding the putative initiating methionine. The deduced a皿ino   acid sequence is displayed below the nucleotide sequence as a single−let七er code s七ar’ting from methionine..The se−   quences matching those of peptide fragments indicated after tryptic digestion of the recombinant DPP皿are under−   lined. Tlhe putative polyadenylation signa1 is indicated by boldface.

(5)

松本歯学 32(1)2006 15 怠 曇 ♂ 間 毛 ’5 120 100 80 60

40

20

0 ● ■ 一15    −14    −13    −12    −11 一10

EM=≧E十M

  [E][M]

Kd=

   [EM]

Kd=解離定数

[M]=遊離亜鉛イオン濃度

(キレート化剤の亜鉛金属緩

 衝液でコントロールした)

E=アポ酵素

      loglZn2+]

図5:Relationship between residual enzyme actiVity and log[Zn2+].The assays were conducted in 100   μ1 of 50 mM phosphate buffer, pH 7.4, containing 900μM∼251nM 2,6−pyridine(licarboxyla七e(−   PA)and 100μM ZnSO4. After equiIibration between apo−DPP M and 2,6−PA fbr the Zn2+ions   (60 min incubation at 25℃), reactions f{)r the enzyme activity were perfbmled with the standard   enzyme assay’ 表2:Recombinant Dipeptidyl peptidase M

DPP皿は亜鉛酵素であることが明らかになった.

cDNA :2653 bp

CDS  :29−2242

    738aminoacids

MW  :83033

pI   :4.94

ライブラリーから,イムノスクリニング法で

DPP皿クローンを分離した2°).ラットDPP皿

cDNAの塩基配列ならびにタンパク質データを図

4と表2に示す.推定アミノ酸配列は,精製酵素

のエドマン法で決定した5個のペプチドと一致し

た.アミノ酸配列の相同検索では,酵母の塩基配

列からi推定した仮想タンパク質01232と40.4%と

高い相同性を示したのみで,他に相同性を示すタ

ンパク質は存在しなかった.しかしアミノ酸配列

内にZincinと類似した“HELLGH”配列がある

ことから,原子吸光法で亜鉛を測定した結果,タ

ンパク質1分子に1原子の亜鉛が存在することが

明らかになった.亜鉛イオンの触媒活性に対する

作用を調べるため,亜鉛との解離定数(図5)を

求めたところ,凪=2.5×10−13Mで亜鉛イオンと

非常に高い親和性を示した.一般的に金属酵素の

解離定数は10−9M以下になる,参考に他の金属酵

素の解離定数を表3に示す.これらの結果から

DPP皿の活性中心の決定

 X一線結晶解析により,タンパク質の立体構造

が明らかにされてきた,しかし生体内で同様の構

造を取って生理活性を示すかどうかは不明で,変

異実験での活性の変化によって証明される.

Zincinと類似した“且ELLGH”に注目して,

NBRF−PIR protein sequence databaseを検索し

たところ,鉄酵素であるチロシン水酸化酵素,ト

リブトファン水酸化酵素ならびにフェニールアラ

ニン水酸化酵素にまったく同一の配列が存在した.

これにより“HELLGH”配列が金属配位モチー

フの可能性が高いと推測し,点変異実験を行っ

た21).ヒスチジンをチロシン(H450Y, H455

Y)に,グルタミン酸をアラニンとアスパラギン

酸(E451A, E451 D)に置き換えた変異体遺伝

子を含むプラスミド感染菌を培養し,DPP皿1活

性を測定した.図6に示すように,HELLGHモ

チーフ内の置換体H 450 Y,H455Y, E451Aな

らびにE451Dは全く活性を失った.一方,この

モチーフのC一末端側に,N一末端から474番目の

グルタミン酸変異体(E474A, E474D)は,野

性型に対して140%の活性を示したのに対し,他

の3グルタミン酸残基の変異体(E493A, E493

(6)

16 璽1・・ 曇 ξ12° l° i。。 茎

280

i

の   §

合40

k

ヨ 2o 吾 合 深澤:Identification of novel zine binding motif on DPP皿 H4seELLGH45s−E474−E493−E50s−E555 WT L453 DA DA DA DA DA  Y  Y  deletion E451 E474 E493 E508 E555 H450 H455 図6:Enzyme activity of rat DPP皿mutants in the celI   suspensions. DPP皿 activity in suspensions of   transfected E. coli cells is expressed as a percentage   of the wild−type DPP皿actiVity. Measurements are   the mean of four or five independent cul七ures. The   means value for wild−type DPP皿corresponds to   72.3nmol/min・/mg of protein. T[he asterisks mean   Ilot detectable、

D,E508A, E508D, E555AならびにE555

D)は活性の低下を示し,特に508番目のグルタ

ミン酸をアラニンに置き換えた変異体(E508

A)はまったく活性を示さなかった.これらの変

異体の酵素活性の変化に基づきH肌LGHモチー

フ内の2個のヒスチジンとグルタミン酸ならびに

508番目のグルタミン酸が活性に直接関与するも

のと考え,これらの変異酵素を単一に精製し分析

した結果を表4に示す.450番目と455番目のヒス

チジンのチロシンへの置換は活性も亜鉛イオンも

共に失うのに対し,451番目グルタミン酸のアラ

ニンとアスパラギン酸への置換は,亜鉛イオンを

タンパク質1分子に対し1原子保持しているにも

かかわらず,完全に失活した.この結果はモチー

フ内の二つのヒスチジンが亜鉛イオンに配位し,

グルタミン酸は触媒作用に関与することを示した.

アミノペプチダーゼファミリーの場合(ApA22)or

ApB23・24)),亜鉛の第3の配位子は, zincinモチー

フから19残基C一末端側のグルタミン酸であるが,

DPP皿では,同位置のグルタミン酸のアラニン

(E474A)ならびにアスパラギン酸(E474D)

への置換酵素は,共に野性型酵素とほぼ同様の酵

素化学的性質示したのに対し,HELLGHモチー

フから53残基C一末端側のグルタミン酸(Glu508)

のアラニンへの置換酵素(E508A)は,亜鉛イ

オンならびにDPP IH活性共失った.この結果か

ら第3の配位アミノ酸はHELLGHモチーフから

53残基C一末端側グルタミン酸(Glu508)である

ことが明らかになった.

DPP皿の活性中心の立体構造予測

 1997年,Goodwillらは,チロシン水酸化酵素

のX一線結晶解析を行い,H肌LGHモチーフが

鉄イオンと配位していることを報告した25).図7

はDPP皿,チロシン水酸化酵素ならびにサーモ

ライシンの活性部位のアミノ酸配列(A)とX一

線結晶解析のデータから計算されたサーモライシ

ン26)とチロシン水酸化酵素の金属結合部位を重ね

合わせた構造予想図(B)である.チロシン水酸

化酵素は2つの配位アミノ酸であるヒスチジンの

間にサーモライシンより1分子多い3個のアミノ

酸が存在しているにもかかわらず,亜鉛と鉄イオ

      o

ンの距離は非常に近く1.14Aで,配位角度はそ

れぞれ100度と88度になり類似の原子配置をとる

ことが予想された.またDPP IHのHELLGHモ

チーフ内のアミノ酸をひとつ削除しzincinと同

じ配列にしたL453−deletion変異体は表4に示す

様に,二次反応速度(k,a、1km)の値が5分の1と

少し減少した以外は野性型酵素とほぼ同じ酵素化

学的性質を示し,X一線結晶解析の分析を支持す

る結果となり,DPP皿はサーモライシンと類似

の活性中心構造をとるものと考えられた.さらに

表3:Zinc dissociation constant in several metalloenzymes

Enzyme name

Kd(M) co−ordination residues Carboxypeptidase A42)     (bovine) Carbonic anhydrase43)     (bovine) Yeast aminopeptidase 1 “) 3×10−11 3×10−12 2.8×10−8 His, His and Glu His,His and His Asp, Asp, Asp, Glu and且is

(7)

松本歯学 321 2006

17 Met墨binding and qctive residues of DPP lll

Thermolysin

DPP l11

Tyrosine

 hydroxylase

△◎ △

HExxH

△() △

HEx xH

   △

HEx xH

19

52

39

E

E

E

△;Metal binding residues, ◎;active residue

図7A

図7BISuperposition ofthe zinc binding residues in ther−    InOlysin OntO the active Site ill ty1’()Sine hydrOxy−    laSe. In therino】VSill. t▲he VetlO“・reSi(IUeS are HiS1.IL’.    His1』4ti、 and GhuifsG and the l〕ink residuc is G]u1’i:1. In    tyrOSine hydrOxylase, the green residues are llisl膓’ll.    1/lit.II,lt.;and Cilu/sTt;and red residue is Glu川z. This fig−    ure was generat、ed fl・om PDB flles l IIYT21;. and l    TOH:s. ! !

 O

 ll /C\

R  NH

   1 DPP IIl          Glu508 、   1      ’       ’

㊧”

!    、 ノ      、       

     Hb−H−”O\

       u/ 図8:The putative Ciltalytic lnecha!〕iSm oi’DI)Pll[dedueed    f’}’Oll) that ot’th〈主rlllolysin propog, ed by Matthe、vs∼    aiid the site_directed mut.agいnesis studies ol〕DPP    II].Substrate and“・ater molecules are shoWn ill red    lllld blue. reSPuctivelぎ.

DPP lllの亜鉛イオンを他の:1川イオンのコバル

トならびに銅イオンに置換して行った電∫・スピン

共鳴スペクトル分析の結果=1’は.カルボキシペ

プチダーゼA二‘・’.‘ならびにサーモライシンと同様,

金属イオンと配位しているヒスチジン(N)2個,

グルタミン1駿(0)ならびに水分∫・(O)は[JLI 1[’1i

体構造をとることが証明された.これらの結果か

ら導きだされたDPP IHの活性中心構造と角虫媒作

川機構の〕二想図を図8に示す. ソ∫,サーモライ

シンならびにカルボキシベプチダーゼAの銅イ

オン置換酵素はそれぞれの酵素活性をほとんど大

う1・1L,11.’のに対し、 DPP IHの場合は,銅ならびにコ 表4 :1〈inetic Paralneters and zinc col〕tents ofthe mutatecl proteins     〔H.,i,‘,E.,,,,,LL.,,GI・L5一一一E.,,⊂一一E】!,、r−−Er,1‘H−一一E,,r,s.}

Mutant

K,. ×101  le、rt ×Sec 1 k、、,i/K,, ×1ぴ Wild−type L’u’Ldeletion

E451D

E451A

H450Y

H455Y

E474D

E474A

E508D

E508A

3.71±0.56 2.36±0.09 2.83±0.24 2.56±0.19 5.85±0.61 16.6 1.75 not detectable not detectable not detectable not detectable 24.1 27.4    1.05 110t detectable 4.47 O.74 8.51 10.70 0.17  Zinc c〔}ntent 111()lS/mol OfprOtein 1.03±0.04 0.96±0.04 1.03±0.08 1.10±0.04 0.10±0.02 0.07±0.03 O.93±0.03 0.97±0.05 0.43±0.10 0.07±O.05

(8)

18 深澤:Identification ofnovel zine binding motif on DPP皿 表5:Kinetic parameters for Arg−Arg−NA and metal contents of various metallodipeptidyl pepti−   dase田sat pH 7.4 Kn, ×10’n h,at ×S−1 k、,。t/K,n x104M−ls−1  metal content atom/mol of protein Zn2’_DPP皿 Co2’−Dppm Cu2+_DPP皿 8.1±1.0 8.2±0.9 99±1.1 7.2±0.2 7.0±0.1 10.1±0.3 8.8 8.5 10.2 0.8±0.1 1.0±0.1 1.1±0.1

バルト置換酵素とも亜鉛酵素と同様の酵素化学的

性質を示した(表5).これは,Dpp mの活性中

心はより自由度が高いか,あるいは他の異なる活

性機構の可能性も考えられ,生理的に重要な役割

を持つ可能性が示唆された.

今後の課題

 タンパク質の結晶化は,タンパク質の機能解析

に多くの情報を与える.亜鉛酵素であるロイコト

ルエンA、ヒドロラーゼは,アミノペプチダーゼ

活性とエポキシドヒドラーゼ活性の2機能を持つ

酵素で,Il}’1害剤との複合体のX一線結晶解析デー

タから活性中心構造(図9)3:S’3’t)が予想され,その

活性中心を構成するアミノ酸の変異実験で,アミ

ノ末端認識アミノ酸残基(Glu27], Glni:s{i)35」やエ ポキシドヒドラーゼ触媒アミノ酸残基(Asp:i75):’6)

など新たに同定された.同時に,同じファミリー

のアミノペプチダーゼAでは,ロイコトリエン

A4ヒドラーゼとの相同検索で,新たにエキソペプ

チダーゼ活性認識サイトの決定:S7),触媒部位モデ

ルの構築捌などがおこなわれた.他に類似酵素が

まだ見出されていないDPP皿にとって,酵素の

結晶化は必須で,ドイツのマックスプランク研究

所のBode博士と共同研究を進めていたが,いま

だ成功していない.①Dppmのジペプチドを切

り出す特異性の関与部位はどこか,②アミノ末端

側の400残基のタンパク質部分の働きは何か,な

ど疑問点を明らかにするため,ラット以外の

DPP In酵素の調整も考えて結晶化を推進したい

と考えている.また哺乳動物のDPP IHはまだ生

理的役割は不明であるが,ゴキブリ3Sやショウ

ジョウバエ川などの昆虫のDPP皿は可溶型と膜

結合型があり,中枢神経細胞表面に局在し神経伝

達物質のプロクトリンを分解する11)ことが明らか

にされている.哺乳動物ではDPP皿は可溶性酵

素とされているが,ラット脳で膜結合型酵素の存

a

b

        巨≡コ[Glu 296][唖

   匝コ[鉋 ◎   [亘1

匝璽][垂コ

図9:The putative leukotriene A4 hydroiase(LTA,1)binding cavity. a, Transparent surface representation of the pocket(in   green) with the bestatin molecule shown in red. b, Schematic representation of the proposed binding of LTA4 into the   cavity.

(9)

松本歯学 32(1)2006

在が示唆されている18)ことなどを考慮し,DPP皿

がどのような形で細胞内に存在しているのかを明

らかにしたい’と考えている. 文 献 1)且andbook of Proteolytic Enzymes (2004)ed−    ited by Barre七t AJ, Rawlings ND and Woessner    JF. Academic Press

2)Matthews BW and Weaver L且(1974)The

   binding of lanthanides tO themlolysin. Bio−    chemistry 13:1719−25. 3)Rees DC, Lewis M and Lipscomb WN(1983)    Refined crystal structure of carboxypeptidase    Aat 1.54 A resolution. J Mol Biol 168:367−87. 4)Schmid MF and Herriott JR(1976)Structure    of carboxypeptidase B at 2−8 A resolution. J    Mol Bio1103:175−90. 5)Su七ton BJ, Artymiuk PJ, Cordero−Borboa AE,    Little C, Phillips DC and Waley SG(1987)An    X 一 ray 一 crystallographic study of beta−laku−    tamase H from Bacillus cereus at O.35 nm reso−    1ution. Biochem J 248:181−8. 6)Hough E, Hansen LK, Birknes B, Jynge K,    Hansen S,且ordvik A, Little C, Dodson E and    Derewenda Z(1989)High−resolution(1.5A)    crystal structure of phospholipase C仕om Ba−    cillus cereus. Nature 338:357−60. 7)Kim EE and Wyckoff HW(1990)Structure of    alkalille phosphatases. Clin Chim Acta 186:    175−87. 8)Vallee BL and Auld DS(1990)Zinc Coordina−    tion, Function, and S七ructure of Zinc Enzymes    and Other Protein. Biochemistry 29:5647−59. 9)Kurisu G, Kinoshita T, Sugimoto A, Nagara A,    Kai Y, Kasai N a皿d Harada S(1997)Structure    of the zinc endoprotease fをom Streptomyces    caespi七〇sus. J Biochem(Tokyo)121:304−8. 10)Springman EB, Angleton EL, Birkeda1−Han一    忌en且and Wart HE(1990)Multiple modes of    activation of Iatent human fibroblast collage−    nase:Evidence」f()r the role of a Cys73 active−    site zinc complex in latency and a“cysteine    switch”mechanism for activation. Proc Natl    Acad Sci USA 87:364−8. 11)Jiang W and Bond JS(1992)Families of met−    alloendopeptidases and 七heir relationships.    FEBS 312:110−4. 12)Hooper NM(1994)Families of zinc me七al−    Iopeptidases. FEBS Letters 354:1−6. 13)Dawlings ND and Barre七t AJ(1995)Evolu−    tionary Families of Metallopeptidases. In 14) 15) 16) 17) 18) 19) 20) 21) 22) 23) 24) 25) 19 Methods in Enzymology 248, PP 183−228. eds. .Ellis S and Nuenke JM (1967)Dipeptidyl arylamidase皿 of the pituitary. Purification and characterization. J Bio1. Chem 242:4623 −9. Lee C−M and Snyder SH(1982)Dipeptidyl一 ㎜inopeptidase皿of Rat Brain. J Biol Chem 257:12043−50. Shimamori Y, Wa七anabe Y and Fujimoto Y (1986) Purification and Characterization of

Dipeptidyl Amillopeptidase皿 f士om Hllman

Placenta. Chem. Pharm. Bull 34:3333−40. Abramic M, Zubanovic, M and Vitale L(1988) Dipeptidyl peptidase皿from human erythro− cytes. Biol. Chem. Hoppe−Seyler 369:29−38. Gorenstein C and Snyder SH(1980)Enkepha− rinases. Proc. R. Soc. Lond. B Bio1. Sci 210: 123−32. Kokubu T, Akutsu H, Fujimoto S, Ueda E, Hi− wada K and Yamamura Y(1969)Purification and properties of endopeptidase f士om rabbit red cells and its process of degradation of an− giotensin. Biochim Biophys Acta 191:668−76. Fukasawa K, Fukasawa KM, Kanai M, Fujii S, Hirose J and Harada M(1998)Dipeptidyl pep− tidase皿is a zinc metallo−exopeptidase、 Bio− chem J 329:275−82. Fukasawa K, Fukasawa KM, Iwamoto H. and Hirose J(1999)HELLGH motif of ra七Liver Dipeptidyl peptidase皿is involved in zinc coor− dination and the catalytic activity of the en− zyme. Biochemistry 38:8299−303. Vazeux G, Wang J, Corvol P and Llorens− Cortes C.(1996)Identification of residues es− sential f()r catalytic activity and zinc coordina− tion in Aminopeptidase A. J Biol Chem.271: 9069−74. Fukasawa KM, Fukasawa K, Kanai M, Fujii S and Harada M(1996)Molecular cloning and expression of rat liver Aminopep七idase B. J Biol Chem 271:30731−5. Fukasawa KM, Fukasawa K, Harada M, Hi− rose J, Izumi T alld Shimizu T (1999) Aminopeptidase B is structurally related to Ieukotoriene−A4 hydrolase bu七is not a bifunc− tional enzyme with epoxide hydrolase activity. Biochem J 339:497−502. Goodwill KE, Sabatier C, Marks C, Raag R, Fitzpatri(虫PF and S七evens RC(1997)Crys七al structure of tyrosine hydroxylase at 2.3Aand its implications fbr inherited neurodegenera− tive diseases. Nat Struct Bio14:578−85.

(10)

20 26) 27) 深澤:Identification of novel zine binding motif on DPP皿 Monzing AF and Matthews BW(1984)Binding of N−carboxymethyl dipeptide inhibitors to thermolysin determined by x−ray crystallogra− phy:anovel class of transition−si七e analogues for zinc peptidases. Biochemistry 23:5724−9. Hirose J, Iwamoto H, Nagao I, Enmyo K, Sugao H, Kanemitsu N, Ikeda K, Takeda M, Inoue M, Ikeda T, Matsuura F, Fukasawa KM and Fukasawa K (2001)Characterization of     metal 一 substituted dipeptidyl peptidase 皿     (Rat liver).Biochemistry 40:11860−5. 28)Hirose J, Kamigakiuchi且, Iwamoto且, FUjii H,     Nakai M, Takenaka M,1(ataoka R, Sugawara     M,Yamamoto S and Fukasawa KM(2004)The     metal−binding motif of dipeptidyl peptidase III     directly influences the enzyme activity in the     coPPer derivative of dipeptidyl peptidase III.     Arch Biochem Biophs 431:1−8.

29)Rosenberg RC,Root CA, Bemstein PK and

    Gray正IB (1975)Spectral studies of copper     (II)carboxypeptidase A and related model     complexes. J Am Chem Soc 97:2092−6. 30)Rosenberg RC, Root CA and Gry HB (1975)     Electronic spectral and magnetic susceptibility     studies of nickel ([) and cobalt (H) car−     boxypeptidase A complexes. J Am Chem Soc     97:21−6. 31)Auld DS, Geoghegan K, Galdes A and Vallee     BL(1986)Rapid−scanning cryospectroscopy of     enzyme−substrate−inhibitor complexes of co−     balt carboxypeptidase A. Biochemistry 25:     5156−9. 32)Holmquist B and Vallee BL(1974)Metal sub−     stitutions and inhibition of thermolysin:Spec−     tra of the cobalt enzyme. J Biol Chem 249:     4601−7. 33)Thunnissen MMGM, Nordlund P and Haegg−     str6m JZ(2001)Crystal struc七ure Of human     leukotriene A4 hydrolqase, a bifUnctional en−     zyme in influammation. Nature Strl Boil 8:     131−5. 34)Thunnissen MMGM, Andersson B, Samuelsson    \B,Wong C一且and Haeggstr6m JZ(2002)Crys−     tal structures of leukotriene A4 hydrolase ill     complex wiyh captopril and two competitive     tight−binding inhibitors. FASEB J 16:1648−     50. 35)Rudberg PC, Tholander F, Thunnissen MM     and Haeggstrom JZ(2002)Leukotriene A4 hy−     drolase/aminopeptidase. Ghltamatre 271 is a     catεdytic resaidue with specific roles in two dis−     tinct enzyme me()hanisms. J Biol Chem 277:     1398−404. 36)Rudberg PC, Tholander F, Thunnissen MM,     Samuelsson B and Haeggstr6m JZ(2002)Leu−     kotriene A4 hydrolase:selective abrogation of     leukotriene B 4 fbnnation by皿utation of as−     partic acid 375. Pro Natl Acad Sci USA 99:     4215−20. 37)Rozenfeld R, Iturrioz X, Okada M, Maigret B     and Llorens−Cortes C (2003) Contribution of     molecular modeling and site−directed mutage−     nesis to the identi丘cation of a new residue, glu−     tamate 215, involved in七he exopeptidase speci−     ficity of Aminopeptidase A. Biochemistry 42:     14785−93. 38)Rozenfeld R, Iturrioz X, Maigret B and Uorens     −Cor七es C(2002)Contribution of molecular     modeling and site−directed mutagenesis to the     identification of two structural residues, Arg−     220and Asp−227, in Aminopeptidase A. J Biol     Chem 277:29242−52.

39)Mazzocco C, Fukasawa KM, Raymond A−A

    and Puiroux J (2001)Purification, partial se−     quencing and characterization of an insect     membrane dipeptidyl aminopeptidase that de−     grades七he insect neuropeptide proctolin. Eur J     Biochem 268:4940−9. 40)Mazzocco C, Fukasawa KM, Auguste P and     Puiroux J (2003) Characte]dzation of a fUnc−     tionally expressed dipeptidyl aminopeptidase     皿from Z)ros(∼ρhilαmelαnogαster. Eur J Bio−     chem 270:3074−82. 41)Mazzocco C, Gillibert−Duplantier J, Neaud V,     Fukasawa NV[, Claverol S, Bonneu M and Pui−     roux J (2006) Identi丘cation and characteriza−     tioll of two dipeptidyl−peptidase皿isofbrms in     Drosoρhilα melαnogαster. FEBS J 273:1056−     64.

42)Coleman JE and Vallee BL(1961)JBiol

    Chem 236:2244−9. 43)Lindskog S and Nylnan PO (1964)Biochiln     Biophys Acta 85:462−74.

44)Rohm KH (1985)Matal binding to yeast

    aminopeptidase I. Eur J Biochem 146:633−9. 45)Ma七thews BW(1988)Structural basia of the     action of themolysin and related zinc peP七i−     dase. Acc Chem Res 2i:333−40.

参照

関連したドキュメント

LD1 Isoenzyme as a Marker of the Quality of Lactate Dehydrogenase Measurements Keiko Yoshikuni*, Kiyoh Tanishima**, Zou Hong**, Takayoshi Yamagishi** * Division of Clinical Laboratory

インスリンは26S プロテアソーム活性を低下させる  インスリンを2時間作用させた際のプロテアソーム活 性をin-gel

一定の抗原を注入するに当り,その注射部位を

実験は,試料金属として融点の比較的低い亜鉛金属(99.99%)を,また不活性ガ

ときには幾分活性の低下を逞延させ得る点から 酵素活性の落下と菌体成分の細胞外への流出と

ヘテロ二量体型 DnaJ を精製するために、 DnaJ 発現ベクターを構築した。コシャペロン 活性を欠失させるアミノ酸置換(H33Q または

「課題を解決し,目標達成のために自分たちで考

び3の光学活`性体を合成したところ,2は光学異`性体間でほとんど活'性差が認め