山形大学 理工学研究科
バイオ化学工学専攻
准教授
今野 博行
Polyoxometalate (POM)
金属元素に酸素が6個配位した MO6を基本骨格とする金属酸化物 クラスターアニオン 構造・構成元素・対カチオン等を 制御することで、様々な機能性を 付与できる可能性 MO6 (octahedron) ( PxMyOz )n 1 nm • 酸触媒 • 酸化剤 • 医薬品 (癌、HIV、アルツハイマー病) • ナノマテリアル • フォトクロミック材料金属酸化物クラスターアニオン:
ポリオキソメタレート
0 25 50 75 100 150 200 Concentration of α-K6[P2W18O62]·nH2O (μg/mL) 2013年、POMの細胞膜破壊作用を並河らが発見* POMの抗菌活性試験を行った結果、グラム陽性菌のブドウ球菌に 対し MIC ( 最小阻害濃度 ) = 100 μg/mL の抗菌活性 ブドウ球菌培養液が青色に呈色
* Nabika, H., et al., RSC Adv. 2013, 3, 21271-21274
After 3 h
ブドウ球菌表面上で酸化還元 反応が進行したと仮定 チオール含有アミノ酸である cysteine水溶液にPOMを添加 したところ、青色に呈色 Ox. Red. この呈色反応は速やかに進行し、極めて視覚的であるにも 関わらず、先行研究はほとんど行われていない POM L-cysteine [P2W18O62]6- [P 2W18O62]
7-本研究の背景
POMのcysteine検出能の検討
ジスルフィド結合形成反応への展開
1
2
Keggin type POM1. メタタングステン酸アンモニウム (NH4)6[H2W12O40]·nH2O POM2. ケイタングステン酸 H4[SiW12O40]·nH2O POM3. リンタングステン酸 H3[PW12O40]·nH2O POM4. リンモリブデン酸 H3[PMo12O40]·nH2O POM5. リンモリブデン酸アンモニウム (NH4)3[PMo12O40]·nH2O Dawson type POM6. リンタングステン酸カリウム α-K6[P2W18O62]·nH2O POM7. 1欠損リンタングステン酸カリウム α-K10[P2W17O61]·nH2O POM8. 3欠損リンタングステン酸ナトリウム α-Na12[P2W15O56]·nH2O • Blue octahedrons : W or Mo • Red dots : O
Keggin type Dawson type
[PW12O40]3- [P
2W18O62]
POMの作製法
85% H3PO4 Na2WO4 H2O reflux 100℃, 8h KCl Na+P 2W18O62 6-1) recrystallization 100℃, H2O 2) cooling 5℃, 1 day K6[P2W18O62] • 10H2O washing XRD pattern of POM6Mixture of 10 mg/mL L-cysteine (500 µL) and 10 mg/mL POM1-8 (100 µL) POM1〜8 を用いたcysteineの検出 0 1 2 3
POM1 POM2 POM3 POM4 POM5 POM6 POM7 POM8
A
bsor
ban
ce
After 24 h, 700 nm
POM1 POM2 POM3 POM4 POM5 POM6 POM7 POM8
After 24 h
POMを用いたcysteineの検出 (1)
POM4
Cysteineに対してH3[PMo12O40]·nH2O (POM4) が最も高い反応性
After 10 min
Gly Ala Val Leu Ile Phe Cys Ser Pro Met
Gln
Asn Thr Tyr Trp Asp Glu His Arg Lys
Mixture of 10 mg/mL L-amino acid (100 µL) and 10 mg/mL H3[PMo12O40]·nH2O (20 µL)
H3[PMo12O40]·nH2O (POM4) を用いたcysteineの検出
H3[PMo12O40]·nH2Oはcysteineのみを選択的に検出
ab un dan ce 0 1. 0 2. 0 3. 0 4. 0 5. 0
X : parts per Million : Proton
4.2 4.1 4.0 3.9 3.8 3.7 3.6 3.5 3.4 3.3 3.2 3.1 3.0 2.9 2.8 (t ho us an dt hs ) 0 10 .0 20 .0 30 .0 40 .0 50 .0
X : parts per Million : Proton
4.2 4.1 4.0 3.9 3.8 3.7 3.6 3.5 3.4 3.3 3.2 3.1 3.0 2.9 2.8 4. 08 4 4. 07 6 4. 06 8 4. 06 0 3. 94 1 3. 93 0 3. 38 5 3. 32 3 3. 31 5 3. 29 3 3. 28 5 3. 24 4 3. 12 9 3. 11 3 3. 10 0 3. 08 2 3. 03 8 3. 02 6 3. 00 7 2. 99 5 2. 95 3 2. 94 5 2. 92 3 2. 91 5 -5 2. 15 u
Fig. 2. 1H-NMR spectra of L-cysteine and
POM mixture (3 days)
チオールの酸化に伴う ジスルフィド結合の形成 1 2 2 [PMo12O40]3- [PMo 12O40] 4-酸化還元状態の変化に 伴うPOMの呈色反応
POMを用いたジスルフィド結合の形成
Mixture of L-cysteine (500 µL) and 20 mM H3[PMo12O40]·nH2O (500 µL) After 2 h 100 mM 10 mM 1 mM 100 μM 10 μM 1 μM control After 2 h, 700 nm 0 0.5 1 1.5 2 Absorban ce
Final concentration of L-cysteine
100 mM* 10 mM* 1 mM 100 μM 10 μM 1 μM Control
Detection limit
Fig. 3. Transition of absorbance by concentration of L-cysteine
After 24 h
Mixture of 10 mg/mL protected cysteines (1 mL, DMSO) and 10 mg/mL H3[PMo12O40]·nH2O (200 µL)
Boc-Cys-OH Z-Cys-OH H-Cys-OBn H-Cys-OMe Fmoc-Cys-OH
保護基の立体障害がPOMとの反応性に大きく影響する
--1 5 .7 2 ---13 87 187 287 4 9 mV Time (min) --1 6 .1 2 -- --2 9 .8 ---11 89 189 289 389 4 9 mV Time (min) After 10 min Addition of H3[PMo12O40]·nH2O (1.8 mg) to 10 mM glutathione aqueous solution (1 mL)
Fig. 4. HPLC profile of glutathione and POM mixture
GSH GSSG H3[PMo12O40]·nH2O H2O, r.t., 24 h GSH GSSG tR = 5.72 tR = 9.80
POMを用いたglutathioneの検出
Mixture of 10 mg/mL pentapeptides (800 µL) and 10 mg/mL H3[PMo12O40]·nH2O (200 µL)
Table 1. Reaction of pentapeptides with POM
entry sequence with POM
1 Ac-Ser-Cys-Ala-Phe-Ile-NH2
2 Ac-Ser-Gly-Ala-Cys-Ile-NH2
3 Ac-Ser-Phe-Cys-Phe-Ile-NH2
4 Ac-Ser-Gly-Cys-Gly-Ile-NH2
ペプチドのアミノ酸配列によりPOMとの反応性は大きく異なる After 24 h, 700 nm 0 1 2 3 3 4 5 6 Cys Absorban ce 4 Cys
Fig. 5. Absorbance of
penta-peptides and POM mixture
3 2
1
POMを用いたpentapeptideの検出
Oxytocin
H3[PMo12O40]·nH2O DMSO, r.t., 24 h
[M+H]+
= 1007.2919
Fig. 6. HPLC profile of oxytocin and POM mixture Fig. 7. ESI-MS of oxytocin
--5 1 3 .5 6 --6 1 3 .9 8 -- ---50 450 950 12 12.5 13 13.5 14 14.5 15 mV Time (min) --1 1 3 .3 9 -- --2 1 4 .7 4 ---50 450 950 12 13 14 15 mV Time (min) tR = 13.98 tR = 13.39
Oxytocin linear peptide
Oxytocin
[M+H]+
= 1009.4436
Bactenecin
H3[PMo12O40]·nH2O
0.1M HCl aq./DMSO (1:2) r.t., 24 h
Bactenecin
Bactenecin linear peptide
Fig. 9. ESI-MS of Bactenecin
[M+H]+ = 1485.7446 --3 1 0 .3 4 -- --4 1 1 .4 7 20 70 120 170 10 10.5 11 11.5 12 mV Time (min) 2 1 0 .1 2 --3 1 0 .3 8 --4 1 0 .5 9 --5 1 1 .4 8 --20 70 120 170 10 10.5 11 11.5 12 mV Time (min)
Fig. 8. HPLC profile of Bactenecin and POM mixture
tR = 11.47 tR = 10.38
[M+H]+
= 1483.6105
POMのcysteine検出能
ジスルフィド結合形成反応への展開
Keggin型Polyoxometalateの H3[PMo12O40]·nH2Oがcysteineと 選択的に反応し、青色に呈色 POMのcysteine検出能は保護基の 有無やペプチドのアミノ酸配列に より大きく変化 POMを用いたチオールの酸化によるジスルフィド結合性 環状ペプチドの生成を確認結論
従来技術とその問題点
グルタチン、システイン、ホモシステインなどに代表と される生体チオールは、生体酸化還元ホメオスタシスを維 持し、代謝を司る重要物質の一つである。 酸化ストレスや疾患への関与が示唆されている特定のチ オールを検出する手法として分光学的な方法が用いられ る。 エルマンズ試薬(DTNB法) DTNB (λmax = 325 nm) 5-Mercapto-2-nitro benzoic acid (λmax = 412 nm) Mixed disulfide On/off シグナル比が低い 洗浄・単離を必要とする 難水溶性 チオール以外の攻撃を受けやすい新技術の特徴・従来技術との比較
エルマンズ試薬 POM 水溶性 低い 高い 有機溶媒溶解性 高い 低い 安定性 様々な求核攻撃を受ける 加水分解を受けやすい チオール特異的>pH9で分解する 後処理 洗浄・単離が必要 必要としない 5,200円/1 g (同仁化学) 価格 7,600円/100 g (東京化成)想定される用途
本技術の特徴はその手軽さにある。市販の高額な試薬と比較 して感度(シグナル比)が十分でないため、その効果的な 用途を模索中である。 チオールの架橋反応を基盤にしているので、バイオコン ジュゲート(蛋白質と蛍光分子等)試薬としての用途を 想定している。 生体内検査試薬のみならず、水質検査など環境測定分野への 応用も視野に入れて検討している。実用化に向けた課題
現在、アミノ酸、ペプチドについて集中して検討している。 今後、他の生体分子(核酸、糖鎖、脂質など)、チオール系低 分子への検討が必要である。POMの構造改変による感度の向上 にも取り組み必要がある。 さらに蛋白質中のチオールの検出、蛋白質のバイオ コンジュゲート試薬としての可能性を追求する。企業への期待
本方法論を適用可能フィールドの提供
講演者は大学、創薬研究、有機合成などの狭い世界しか
知らないため、本技術が真に活躍できる場所がどこにあるか はっきりと見定めができていない。