培養肝癌細胞に及ぼす DIBUTYRYLCYCLIC AMP の影響
奈良県立医科大学病態検査学教室
悶 本 康 幸 , 辻 井 啓 之 , 中 野 博
奈良県立医科大学第 3 内科学教室
松 本 真 , 中 山 雅 樹 , 辻 井 正 EFFECT OF DIBUTYRYL CYCLIC AMP O N THE
GROWTH OF CULTURED HEPATO お 1ACELLS
YASUYUKI OKAMOTO , HIROYUKI TSUJII and HIROSHI NAKANO De φa r 抑 制 t 0 / C l i n i c o ‑ L α b o r a t o ヮ D i a g n o s t i c s , N a r a M e d i c a l
Universi~yMAKOTO MATSUMOTO , MASAKI NAKAYAMA and TADASU TSUJII T h i r d D ψ a r t m e n t 0 / I n t e r n a l M e d i c i n e , N a r a M e d i c a l U n i v e r s i r y
R e c e i v e d J a n u a r y 9 , 1 9 8 9 S
品 ω u 仰 7 仰 7
he 叩 p a t 加 omac 白 e l 肱 l l swere s t u d i e d with r a t M o r r i s hepatoma c e l l s (HT C ) and human hepatoma c e l l s (HepG
2).DBcAMP i n h i b i t e d DNA s y n t h e s i s i n HTC w i t h o u t c y t o t o x i c i t y . DBcAMP a 1 s o induced t y r o s i n e a m i n o t r a n s f e r a s e (T AT) i n HTC. DBcAMP i n h i b i t e d DNA s y n t h e s i s i n HepG
2ateach t i m e p o i n t d u r i n g t h e 24h ・ c u l t u r e . DBcAMP d e l a y e d t h e p o p u 1 a t i o n d o u b 1 i n g t i m e o f HepG 2 and t h e t i m e a t which t h e p e r c e n t a g e o f t h e c e l l s w i t h mi‑
t o s i s r e a c h e d a p e a k .
These o b s e r v a t i o n s s u g g e s t e d thatDBcAMP h a s an i n h i b i t o r y e f f e c t on t h e growth o f hepatoma c e l 1 s by e l o n g a t i n g t h e c e l l c y c l e .
Index T e r l l l s d i b u t y r y 1 c y c l i c AMP , c u l t u r e d hepatoma c e l l s
緒 言
D i b u t y r y l c y c l i c AMP (DBcAMP) は,最近,ショ ックの治療薬として臨床応用が可能となった薬剤である が
1)21,本剤の主要な薬理作用はすべて c y c l i cAMP の
a n a l o g としてのものであり, 当然,広範かっ多彩な作 用を有することが予測される.本剤は,また,以前より ある種の癌細胞に作用して増殖を抑制したり分化を誘導 することが知られておりわ阿久とくに,ヒトの悪性黒色 腫や神経芽細胞腫については比較的詳細に検討されてい るわめ,肝癌も,木剤の増殖抑制作用が期待されるもの
として,ラットやマウスの培養肝癌細胞を用いた検討は 多くみられているの ~15). しかも,最近,臨床的に本剤 を切除不能な肝癌患者に投与することにより h 今まで有 効な対策の乏しかった門脈腫場塞栓が消失したとする極 めて興味ある報告が出され
16),われわれも同様の効果を 経験し得たことから
17),本都の肝癌治療への応用が注目
される.
そこで今回,われわれは, ラット M o r r i s 肝癌細胞
HTCI 8 ) およびヒト肝癌細胞 HepG
219)に対する DBc
AMP の増殖抑制効果,機能変化の指標としての誘導酵
素への影響について検討をおこない,興味ある成僚を得
( 6 ) 岡 本 康 幸 ( 他 5 名) たので報告する.
実 験 方 法 A . 細胞および試薬
Hepatoma t i s s u e c u l t u r e c e l l s (HTC ,ラット M o r r i s 肝癌細胞 7 2 8 8c ) , newborn b o v i n e s 巴 rum(NBS) , f i 巳 t a l b o v i n e serum ( F B S ) ,非必須ア E ノ倣 (NEAA) , E a g l e の minimume s s e n t i a l medium (MEM) お よ び D u l ‑ b e c c oの MEM20) は , Flow L a b o r a t o r i e s I n c . USA
より購入した. [ 3 H ] t h y m i d i n e . (TdR) は , [ 6
酬3 H ]t h チ midine (>15Cifmmol , NEN R e s e a r c h l ' r o d u c t s ) を 月 J ¥,、た.その他の試薬は,半井化学薬品側より購入し,
ヒ卜肝脳細胞 HepG2 は,京都大学医学部第 2 内や
1国 1 ' I I I 善弘博士より供与されたものを用いた.また, DBcAMP は,第一製薬(附より供与された.
B.培養方法
HTC は , 10% NBS と NEAA を含む E a g l e の M E M 中にて培養した. HTC は , 2 X 1 0
5c e l l s f m l に浮 遊し, 9 6 穴および 35mm 径の p l a s t i cd i s h に 5 0 , 000 c e l l s f c m2 となるように播種し, 2 4 時間培養した後 DBc AMP を含んだ medium に交換し,実験に用いた.
HepG2 は, 10% FBS を含む Dulbecco の M E M 中 にて培養した. HepG2 は, 4 X 1 0
4c e l l s f m l に浮遊し,
HTC の場合と同様の d i s h に , 1 0 , 0 0 0 c e l l s f c m2 となる ように播種し 3 日間培養した後 DBcAMP を含んだ medium ~こ交換し,実験に用いた.培養条件は, 3 7 ' C で , 5 % CO2 および 95% 空気下で行った. なお DBc AMP は medium に終濃度 lmM となるよう添加し て用いた.
C . DNA 合成能の測定
DNA 合成能は, DNA への TdR の取り込みによっ て測定した.
HTC では, 9 6 穴の d i s h で 2 0 時間培養し, さらに 4 時間 l μ c i f w e l l の TdR を加えて培養し,その後トリプ シン処:阻にて細胞を剥離し, 7 % の c o l dt r i c h r o l i c a c i d (TCA) を加え,酸不溶性部分を c e l lh a r v e s t e r を用い て g l a s s f i b e r 印刷、に吸着させ,そのよ七放射活性を液体 シンチレーションカウンターにて測定した. HepG2 で も同じように測定したが, TdR の投与法は次のように 変えた.すなわち,投与量は o . 1 μ c i f w e l l とし 2 4 時間を 6 分割した各 4 時間での取り込みを経時的に測定した.
また酸不溶性部分の DNA 量は S e t a r o と M o r l e y 2 1 ) の蛍光法により測定した.
D . 誘導酵素の組織化学的染色
HTC を 3 日間培養後, Dulbecco の p h o s h a t e ‑ b u f ‑
f e r e d s a l i n e (PBS) にて細胞を 3 回洗浄し, I~I 完投乾燥 固定した後,組織化学的に t y r o s i h e a m i n o t r a n s f e r a s e (TAT) および r ‑ g l u t a m y l t r a n s p e p t i d a s e ( r
田GTP) を 染色した. TA T:は Thompson と Thomkins2 2) の方 法 , r ‑GTP は Harada ら 3 2 ) の方法で染色した.判定に
l 然しては,全く染色されない場合を陰性,一様な染色像 を得られた場合を陽性とした.
E.細胞数および核の m i t o s i s を有する訓 1 1 胞の出現本 の算出
HepG2 を 35mm 径の d i s h で培養し, 2 4 日奇聞を 6 分割した各 2 4 時間で細胞を Giemsa 染色し,光顕的に d i s h の任意の辺縁から中心にむかつて細胞をし 0 0 0 個ず つ2 回観察し,核の m i t o s i s の出現率を求めた.細胞数 は,単層地養をトリプシンにて分散処 n f l した後,血球算 定盤にて測定した.
F . その他
培養終了時の細胞の v i a b i l i t y は , トリバンプソレー染 色により光顕的に観察し,同医 l に培養前後の medium 中の l a c t a t edehydrogenase (LDH) 活性の差を遊離酵 素の l っとして測定した. データはすべて 6w e l l の平 均(土標準偏差)で表現し,有意差検定には S t u d e n t の t ‑ t e s t を用いた.
全土
Eヨ
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ロ : > 1 < :
A . HTC の DNA 合成能に対する DBcAMP の影響 HTC の DNA に取り込まれた TdR の量は, C o n t r o l で 2 9 0 . 2 1 土 2 2 . 0 7(dpmfng DNA ,以下同じ), DBcAMP ImM 投与では 9 8 . 6 2 土 1 0 . 1 7 であった, DBcAMP 投与 によ
Iり有意な DNA 合成能の低下が認められた (p<
0 . 0 0 1 ) .
また,培養終了時の細胞の v i a b i l i t y は , C o n t r o l お よび DBcAMP 投与群で差はなく, mediu r P . r l : t の LPH 活性は, C o n t r o l で 2 6 土5( I U f l ,以下向じ), DBcAMP 投与群で, 1 9 土 6 であり,有意差はなかった.
B . HTC の誘導酵素に対する DBcAMP の影響 HTC における TAT および r ‑GTP の組織化学的染 色像に対する DBcAMP の影響を検討した.その結果,
TAT は , C o n t r o l では染色されなかったが, DBcAMP 投与により軽度の陽性像が得られ,本酸素の誘導が認め
られた.逆に, C o n t r o l で陽性で あった r ‑GTP の発現 は, DBcAMP 投与により抑制された.
C . HepG2 の増殖に対する DBcAMP の影響 HepG2 の DNA への TdR の取り込みの投移を F i g . l に示した. ¥ 、ずれの時点でも , DBcAMP は TdR の取
り込みを抑制 j し ま た そ れ は DBcAMP が 100μM お
b h / / /
C o n t r o l 1 0
5
一 E
¥ 心 守 口 一 ﹀ ︿ ) ﹂ ω E コ
c = ω U 2 0
ーーームー‑一ー‑
1 2 1 6 2 0 2 4 H o u r s a f t e r t h e b e g i n n i n g o f e x p e r i m e n t a l c u l t u r e F i g . 3 . E f f e c t o f DBcAMP on change o f c e l l
number o f HepG2 ・ C o n t r o l
D 8 c A M P 1 0 0 μ M
n u
( d H Z O M C ¥ E 立 百
﹀ 切 E 工 判 亡 ︑ 月 間
4 z o
るように作用するものと考えられた.
また,細胞数の推移では, Fig.3に示すように,前値 4.25 土 2 .8 (x 1 04 c e l l s / m l ,以下同じ)に対して, C o n t r o l では実験培養開始 1 6 時間後に 8 . 4 5 土 7.0とほぼ倍加した が , DBcAMP投与では2 0 1 1 ,)閉まで噌加せず, 24 時間後 に8 .7 5 士7 . 1 となり,倍加する 11~:i点の遅延が認められた.
, 4 8 1 2 1 6 2 0 2 4 H o u r s a f t e r t h e b e g i n n i n g o f e x P e r i m e n t a l c u l t u r e F i g . 1 . E f f e c t o f DBcAMP on DNA s y n t h e s i s o f
HepG2 ・
DNA s y s t h e s i s was dctermined i n everyιh i n t e r v a l during t h e c u l t u r e .
HTC の増般に対する DBcAMP の影響については 諸家により報告されているが
9)‑11)13),とくに vanWijk らのは,高濃度 (1‑2mM) で、みられる増殖の抑制は非 特異的な毒性によるものとし, • Reuber H 3 5すなわち ラット肝癌細胞 H‑4 ・ E
聞E
幽C3 などでみられる特異的な 増殖抑制とは異なるとした.さらに Hargroveと Grar ト ner
l3)は,培養に用いる血清中の酵素が DB cA M P か ら a d e n o s i n e 様毒性物質を生じることが増殖抑制の要 因であることを報告している. しかいわれわれの成績 て t 土,培養細胞から medium 中に遊離された酵素活性 や細胞の v i a b i l i t y の違いなどの毒性を示唆する所見は 得られなかった.ただし,今回の検討では DBcAMPの 投与則間は24 時間と短期であり,また細胞の増殖機能の うちでも DNAへの TdRの取り込みについてのみの 検討であるため,毒性があまり前回に出なかったのかも しれない.今後細胞密度や培養期間などの実験条件の変 化も合めた多角的な検討が必要であろう.
DBcAMP による TAT の誘導については Reuber H35においては認められているが2 4 )‑ 2 6 ) , HTCにおい てはその作用があるとする成績
27)とないとする成績
2めが あり,一致した見解は得られていない.ただし,同じよ
うに TAT を誘導することの知られているステロイド ホルモンが HTC で本酵素を誘導することは報告され
察 考
1 2 1 6 2 0 2 4 H o u r s a f t e r t h e b e g i n n i n g o f e x p e r i m e n t a l c u l 土 u r e F i g . 2 . E f f e c t o f DBcAMP on m i t o t i c phase of
HepG2 c e l l s .
n U F h d
( 次 ) E E H E
工ゼ﹀﹀旦一
ω O
半