• 検索結果がありません。

幼生研究のための小テクニック集(1) : サンプル観察についてのFAQ

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2021

シェア "幼生研究のための小テクニック集(1) : サンプル観察についてのFAQ"

Copied!
5
0
0

読み込み中.... (全文を見る)

全文

(1)

幼生研究のための小テクニック集

(1)

サンプル観察についての

F A Q

小 西 光

日々の研究活動の中で必要不可欠であるのに意 外に情報が得にくいものがある. その代表が日常 的に研究者が行っている小さなテクニックあるい はヒント,俗に 『小ワザ』 とか 『裏ワザ』 と呼ば れるものではないだろうか? 論文を読んだり,あ るいは講演を聞いたりして,いざ自分が同じこと をや ってみようという場合に, 実際の話,同じ機 器を使うにしてもそのちょ っとした使い方などは 論文の字面からは分からない場合が多い. これら の小テクニックはその研究室の伝統 ・性格とか 個々の研究者によって創意工夫される個別性が高 いものなので,あえて教科書や論文に記述される ことはまれである . このような小 テクニックは研 究活動の潤滑油的な働きをし ているだけでなく, 見えない土台として ,想像す る以上に研究本体を 支えているのではないだろうか? また ,学会の発表以外の懇談の場において ,そ の結果は具体的には何を使い,どうや って得たの か? との質問をしたり逆に受けることも多々あ る. 学会では発表会場以外の「休憩室」や「談話 室」やらが大切な情報交換の場になるのもこの様 なことが一因と想像される. そのような場で乱雑 に書 きとめたメモが,整理された論文ファイル よ りも役立つことは良く経験するが,これらを使い やすくまとめたパンフレ ッ トがあれば助かるのに と感じたことはないだろうか? そこで,エピ ・カニ類幼生に関する研究活動に おいて質問が多く,かつ活字にされる機会の少な い事柄について , 日頃使 っている 小テクニ ック情 報を提供することを考 えた. その手始めとして, 今回はサンプルを 固定し観察する過程で実際に遭 遇するいくつかの事項について良くある質問集

Kooichi K ONISHI: Miscalleneous techniques for stu dies on decapod larvae (1) F A Qs on observation of larval specimens (F A Q) のかたちで紹介したい.

1.

固定について

0 1

固定液は何が良いか 7

A 1 :

3 - 5 %

の中性ホルマリンが実用的. 種々の固定法が知られているが, 一般的には

3

- 5 %

の中性化 したホルマリンによる固定と保存 が最も 実用的と思われる.

50%

程度のエチレング リコールも良いが,光学顕微鏡での観察以外には ほとんど使えず,万一組織切片等が必要にな って も流用しにくいのが難点である. またホルマリン は薬品として入手しやすくかっ安価であ る. ただ し,そのままではギ酸を含んでいて酸性が強い の で,中性化のために炭酸カ ルシウム, 炭酸マグネ シウムまたはホウ砂を入 れて振とうし, 一晩静置 した後の上澄みを原液として用い る. 問題点はホルマリン液中に長期間サンプルを入 れておくと次第に脆くなることである . そこでデ ータを取り終えた後に長期保存する場合 には,サ ンプルを 一度純水で‘洗 った後に

70%

程度のエタノ ールに移しかえることにしている. それではその 目安とは どの位の時間かということになるが,筆 者は小型 の幼生サンプルでは経験上数カ月一

l

年 としている . くり返しになるが,組織切片や電子顕微鏡観察 を目的とする場合にはそれぞれ適切な固定液が必 要であるし ,最近の P C R 等による D N A 解析のた めには,最初から 純エタノールで固定しておかな ければならない. 0 2 : どの様に保管するか ? A 2 小型瓶に入れて冷暗所に保存する. 入れ物としてはサンプルの大きさと量による が,一般の幼生であれば容量10 - 5 0 m eのガラス製 スクリュー瓶が使いやすい. た だし,口径が策部

(2)

で狭くなっていないものがサンプルの出し入れ上 は良い (図 1). 色素胞な どの退色を少しでも 押 さえるために は冷暗所で保管した方が良い. この ために褐色容器に入 れたりアル ミホイルで包み遮 光する場合もある. ただしこれでも数ヶ月が限度 と考えておいた方が良い. 液浸のサンフ。ルで、注意すべきは保存液の蒸発と サン プルデータの消失である. 前者について特に エタノール類は時々点検すべきであり ,万ーを考 えて 5 0 % グリセ リンを数滴添加しておくと致命的 な乾燥を防止 出来る. 後者については,鉛筆ある いは墨でデータを記入した和紙なとεの小紙片を瓶 に入れておくと ,瓶のラベルなどが取れたりした 場合に役立つ. 筆者の経験では ,鉛筆 ・墨と 和紙 の組み合わせは相当な長期間にわたって消失する ことのない優れた記録媒体であると思う. 最近の幼生研究では論文化する場合にその形態 記載に用いた証拠サンプル

(voucher spec imen)

をしかるべき公的機関 に登録 ・保管することが勧 図 1 サンプルの保存に用いるスクリュー瓶の例. 左 の様に口径が小さいと先細ピンセ ットでも底ま で届かないので注意. められている. いずれにしても標本とは観察 ・分 析されるためにあるのであり,固定したまま放置 するものではない. 最良の保管法とはすみやかに データ 化 して論文等で公表することではないだろ

うかつ

2 .

解剖について

Q

3

: どんな道具で解剖するのか?

A 3:

極細の針,ピンセ ッ ト,ピペッ トが基本. 微小な解剖においては「つまむJ. i切るJ. i移 すJ という基本動作から成 っている. これらの動 作は互いに重復する部分も多いが,それぞれに先 端が極細のピンセ ッ ト,針,およびピペットが対 応している. ピンセットは市販の先細のものの中 から自分の指力に合ったコシの強さの製品を選ぶ ことが大切である. これを必要に応じてさらに砥 石で研いで細くする . 微細針については極細 (00 番) の昆虫針をさらに製図器機用オイ ルストーン で研いで細くしたものを 竹串の先端 に挟んで使っ ている . またタングステン 線の先端 を薬品で溶か して極細の針を作り ,同様 に使う . 図 2 にこれら の針を比較のために並べてみた . ピペ7 卜はサン プルの大きさに応じて,容量1

me

位の市販パスツ ールピペッ トやマイクロピペットの使用済みチッ プ( 容量は

1 - 5

me

位) を 加工して使 っている . その他. 11艮科用の微小鉄もあれば重宝するが, 手作りであるためにかなり高価である .

A

B

C

¥ ー

D

図 2 解剖に用いる微細針の例. 上から,一般の解剖 針 (A ),昆虫針 (8 ),タンクステン線を加工 したもの (C). 比較のためのヒ卜の毛髪 ( D ). 左上のスケールは 1.0mm.

(3)

0 4 :

どう すれば‘微細な解剖が出来るのか

7

A 4 大きいサンプルから始めて徐々に小さく. これは最も良く質問されることの一つであり , またこれこそが幼生研究において 他の手段で置き 換えられない部分である . 一言でいえば練習しか ないが,その場合成体の基本体制を頭に入れてお くと良い. 相手にする物の「っくり」があらかじ め分かっていると非常に作業がはかどるものであ る. また基本的に十脚 甲殻類において幼生の体の っくりは成体の簡略あるいは縮小型で、ある . した がって最初は自分が扱えそうな 大きさのサン プル で練習をして慣れたら徐々に よ り小さいも のに移 行することを勧める . その場合,最初は意図して 太田の針で練習すると良い. 確かに結果として米 粒に字を書くよりも細かい作業をすることになる のであるが,実体顕微鏡下で行うのであるからそ う難しいことではない.

0 5

: プレパラー卜はどうするのか?

A 5

解剖・観察ごとに一時的に作成する. 筆 者 は永久 プ レパラー卜は作 らない方針であ る. あらかじめシリコンで援水コートしたスライ ドグラス上に適量の水を滴下し( 図3),そこに 細いピペット,ピンセットあるいは微細針で解剖 後の微小サンプルを移す. 次にゴム粘土の小球 を 四隅に付けたカバーグラスを静かに上からかぶせ (図4 ),ついで必要に応じてこのカバーグラスを 水平方向に動かしながら,サンプルを転がしてち ょうど見やすい方 向 に向け る( 図5). 解剖と観 察に使用した後の付属肢等は,再びピペッ トや微 細針などにより 1つの標本瓶に戻して保存する. 図3

t

鑓水コートしたスライドグラス (A ) と通常の スライドグラス (8 ). 後で必要になったら , ここから取り出してくり返 して使用出来る rわずか数十 ミクロンの物を選 んで扱えるのか? J と言 われるかも知れないが, これも慣れてしまえば難しい事ではない. 永久ま たは半永久プレパラートにするよりは,経験上こ のやり方の方が現実的であると思う . 図4 カバーグラスの四隅に粘土を着ける作業 (上) と一時プレパラー卜 (下). サンプルの厚さに よってかき取る粘土の量を加減するのがポイン 卜. 図 5 サンプルのオリエンテーション (方向出し ). 指先でカバーグラスをわずかに動かしながら中 のサンプルを転がし,見やすい位置にする.

(4)

図 6 ゾ工ア幼生の第 2 顎脚内肢 (左 ) と,その脱皮 殻 (右). 明 らかに脱皮殻の方が観察しやすい. いずれも中性ホルマリンによる固定.

3 .

検鏡について

0 6

サンプルが不透明で見にくいが? A 6 脱皮殻カずあればそれを用いる . 幼生の形態を観察する場合に, 脱皮殻が良く 使 われていることは意外 に知 られていない. 幼生の 体はそのままでは中身が詰ま って いるので,透過 光では見づらく, K O H 等の処理あるいはエチ レ ングリコールでの固定によっても完全に透明化 す る訳ではない. そこで,中身のなくなった脱皮殻 を使えばこの問題は解消する( 図6 ). 必要に 応

A

i 1

r [

図7 スライドクラスの裏返し観察の ための方法. 通 常の顕微鏡観察 (A ) と裏返し観察 ( B ),お よび実際の写真 (C ). 裏返し観察の ではスラ イド グラスの厚さと対物レ ンズの作業距離の関 係上,

20

倍まで が限界である. じてメチ レンブル一等で染めてから検鏡すると見 やすい場合もある. ただし ,触角の感覚毛や関原 基などの生時に柔らかい部分では使えない. さら にデータとして使える脱皮殻が得られるのは ,ふ 化飼育している場合だけである .

0 7

サンプルの裏側を見るのには?

A

7

プレパラー卜の裏返し観察をする. 観察するものが不透明の場合には表だけでなく 裏からも見る 必要 が出てくる . このためにはちょ っとした工夫が必要となる . 対象サ ンプルが球状 あ るいは 円柱状であれば,前出 図5の様にして見 れば良いが,平板状であるとこの方法が使えない. そこで サ ンプルを裏返して見る必要性が出て来 る. 筆者は図7に示したようにやや大きめのスラ イドグラスにゴム板の小片を貼り付けた 小道具を 用いている. ただし裏返した場合には , スライド グラスはカバーグラスの十倍以上厚いので,作業 距離の関係上

i20

倍の対物 レンズまで」が限度で ある . マイクロスライドという ,一種の属平なガ ラス管に試料を吸い込んで検鏡する場合 もある.

0 8

付属肢のタイプが判別しに くいが‘?

A 8

: 微分干渉顕微鏡で剛毛を判別する. 近年は付属肢等の剛毛の種類とその分布を見る

B

l 1 1

E

(5)

のがスタンダードとなりつつある. しかしこれら 剛毛は複雑な形状のものが多くて判別しにくいも のである. 走査型電子顕微鏡もも ちろん良いが, 手間と時間それに経費を考えると定型業務におい ては非現実的である . こ の様な場合に顕微鏡にノ マルスキー微分干渉装置を付けて観察すると, 剛 毛上の枝赫の状態が見やすくタイプ分けがしやす いことが多い. ただしこの装置もかなり高価なの が一般での使用におけるネックかも知れない. 一般的には ,顕微鏡のコンデンサーを調節して 焦点深度を浅くし, 剛毛の根元から先端までその 表面の状態を順次追 っていくのがコツである .

0 9

休の大きさはどこで測るのか? A 9 頭胸甲の長さで浪IJる場合が多い. 最も変形の少なくてかつ測りやすい部位を選ぶ のが原則である .頭胸甲の形状によ って異なるが, エビやヤドカリの幼生ならば額角から中央後縁ま での距離 を頭胸甲 長として( 図8 A , B ) ,またカ ニでは額赫と背赫の聞の距離で示す場合が多い (図

8 D).

8 C

の様に額角から後側縁先端まで の距離であると ,頭胸甲 が偏圧されたり ねじれて いたりすることが多くて多数のサンプルを計測 出 来ない. いずれにしても ,論文ではどの様な部位 で計測したのかについて図示しておくと良い. 図8 幼生の大きさの計測例. 左は工ビ・ヤドカリ類 の, 右はカニ類の一般的 なゾ エアの頭胸甲を示 している.

010:

どの位の数を見れば良いか7

A

10:

少なくとも

5

個体で変異の有無を確認. もちろん数が多ければ良 いし,また ふ化飼育の サンプルであれば複数の親に 由来するもので検討 するのが望 ましい. しかし ,サ ンプルの解剖 ・検 鏡にはかなりの労力と時間を消費するので,現実 との兼ね合いとなる . どの場合でも個体問の形態 変異はどこかのレベルで存在するが,経験上では 最低5個体見ておけば良いと思われる . 参考まで に剛毛数での経験を述べると,もし変異がある場 合には2 個体,極端には 同一個体の左右の付属肢 同士でも 変異が見られるが,ない場合には

5

個体 の左右つまりサンプル数10でも見られないことが 多い. 上記の長さの問題と も関連す るが,論文で のデータは単に平均値を書いただけではなくて , 可能な限り多目のデータに基づいた平均値と範囲 ( 最大値,と最小値),およ び標準偏差が示されて いるものがこれを 利用 しようと す る者にと っては 有益である . 以上10項目に分けて述べてきたが,これらは本 来が属人的なものであり ,活字 になるほどのまと ま りはないかも知れない. 筆者としては ,これ ら を一つの素材として参考にして頂き,さらに良い 小 テクニックがあれば公開 して頂ければありがた し、 ( 養殖研究所)

図 6 ゾ工ア幼生の第 2 顎脚内肢 (左 ) と,その脱皮 殻 (右). 明 らかに脱皮殻の方が観察しやすい. いずれも中性ホルマリンによる固定. 3 . 検鏡について 0 6 サンプルが不透明で見にくいが? A 6 脱皮殻カずあればそれを用いる

参照

関連したドキュメント

1.4.2 流れの条件を変えるもの

実際, クラス C の多様体については, ここでは 詳細には述べないが, 代数 reduction をはじめ類似のいくつかの方法を 組み合わせてその構造を組織的に研究することができる

この chart の surface braid の closure が 2-twist spun terfoil と呼ばれている 2-knot に ambient isotopic で ある.4個の white vertex をもつ minimal chart

奥付の記載が西暦の場合にも、一貫性を考えて、 []付きで元号を付した。また、奥付等の数

奥付の記載が西暦の場合にも、一貫性を考えて、 []付きで元号を付した。また、奥付等の数

図 21 のように 3 種類の立体異性体が存在する。まずジアステレオマー(幾何異 性体)である cis 体と trans 体があるが、上下の cis

各テーマ領域ではすべての変数につきできるだけ連続変量に表現してある。そのため

いてもらう権利﹂に関するものである︒また︑多数意見は本件の争点を歪曲した︒というのは︑第一に︑多数意見は