• 検索結果がありません。

Microsoft Word - CEQ8000フラグメント解析(L-0013-A-0709)Ver2.doc

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2021

シェア "Microsoft Word - CEQ8000フラグメント解析(L-0013-A-0709)Ver2.doc"

Copied!
22
0
0

読み込み中.... (全文を見る)

全文

(1)

G GeeXXPP//CCEEQQ FFA A vveerr22..00--AAD D

GeXP/CEQシリーズ

フラグメント解析ソフトウエア

クイックガイド

Ver.2

L-0013-A-0709

(2)

フラグメント解析の準備

解析に使用する試薬 製品名 製品番号 サイズスタンダード - 400 608098 60~400bpまでのサイズマーカー サイズスタンダード - 600 608095 60~600bpまでのサイズマーカー サンプルローディングソリューション(SLS) 608082 泳動サンプル調製に使用します ミネラルオイル*1 ---- サンプルの蒸発、酸化を防ぎます *1 ミネラルオイルはサイズスタンダードに付属しています。 泳動に使用する消耗品 製品名 製品番号 キャピラリーアレイ 33-75B 608087 100ランもしくは常温で30日 10mLセパレーションゲル(シングルレール) 608010 12ラン、4℃保存 20mLセパレーションゲル(デュアルレール) 391438 24ラン、4℃保存 セパレーションバッファ 608012 泳動用バッファ、4℃保存 サンプル用マイクロタイタプレート 608001 サンプル用プレート 25枚入り バッファ用マイクロタイタプレート 608044 バッファ用プレート 100枚入り

蛍光プライマー

使用できる蛍光色素 z ベックマンダイD4 z ベックマンダイD3 z ベックマンダイD2 蛍光プライマーのオーダー シグマ アルドリッチ ジャパン http://www.sigmaaldrich.com/japan/lifescience/custom-products.html 蛍光色素の蛍光強度について 蛍光強度は D4 が最も強く、次いで D3、D2 となりま す。1 色で使用される場合は蛍光強度の強い D4 の使 用を推奨いたします

(3)

泳動の用意

泳動サンプルの調製 z フラグメント解析のサンプル調製方法は目的に応じ様々です。ここでは蛍光標識が終わ ったサンプルから泳動用サンプルへの調製方法をご説明いたします。 z 高い塩濃度*2は泳動結果に影響を及ぼし、データ取得を困難にする可能性があります。 ① 蛍光標識したサンプルを必要に応じて希釈します。 ② SLSとサイズスタンダード*3,4, 5のミックスを用時調製します。 ③ ②で調製したミックスをサンプルプレートへ分注します。 ④ 希釈したサンプルを1µL加えます。 ⑤ ミネラルオイルを滴下します。 *2 サンプルの原液を使用する場合、使用量は2µL以内にしてください *3 使用前にボルテックスしてください。 *4 サンプルとのシグナルのバランスによって、使用する量を減らしてください。 *5 サイズスタンダード400bpと600bpは検出するフラグメントサイズに合わせて使い分けてください。 泳動のセットアップ ① バッファプレートにセパレーションバッファ*6を7-8分目入れます。 ② キャピラリ、ゲルが装着されていることを確認します。 ③ サンプルプレートとバッファプレートをロードします。 ④ マニフォールドパージ、キャピラリーフィル*7をマニュアルで行ってください。 ⑤ セットアップモジュールでサンプル名、泳動条件を入力、保存します。 ⑥ 泳動を開始します。 *6 サンプルが入っている列のすべてのウエルにバッファを入れてください。 *7 本体付属のチェックリストをご参照ください。詳細についてはクイックスタートガイド、チュートリアルマ ニュアルをご参照ください。 泳動条件 z 推奨の泳動メソッドはFrag-3、Frag-4です。 泳動条件 泳動温度 泳動電圧 泳動時間 サイズ Frag-1 35℃ 7.5kV 35min 400base Frag-2 35℃ 6.0kV 60min 600base Frag-3 50℃ 6.0kV 35min 400base Frag-4 50℃ 4.8kV 60min 600base

SLS     38.5µL サイズスタンダード  0.5µL 

(4)

2

2

1

1

① ソフトウエアを立ち上げます。 ② メインメニューからFragmentsモジュールを開きます。 ① フラグメント解析モジュールを立ち上げると以下の画面が表示されます。 Raw Data Raw データから開いて解析を行います Analyzed Data 解析済みデータを開きます Open an existing Study

解析済みデータをまとめて管理している Study を開きます

選択して OK をクリックします。 Fragments をクリック

(5)

①でRaw Dataにチェックすると以下の画面が表示されます。

データ名のリストから開く場合はList Viewのタブを選択して、 左側のAvailable画面からデータ を選択して右のSelectedの画面に移して Nextをクリックします。

サンプルプレートイメージから開く場合はPlate Viewのタブを選択して、プルダウンメニューか ら目的のプレートを選択し、解析するデータをクリックしてNextをクリックします。

(6)

3

3

検出されたピークのサイズをコールします。 サイズスタンダード‐400 400ベースまでのサンプル解析に使用します。 サイズスタンダード‐600 600ベースまでのサンプル解析に使用します。 サイズスタンダード‐80 SNP解析に使用します。SNP解析についてはSNP解析チ ュートリアルマニュアルをご参照ください。 DefaultFragmentAnalysisParametersを選択しEditをクリックします。 Generalのタブを選択します。 Slope Threshold ピークのシャープさのパラメータです。値を下げると緩やかなピーク もデータとして検出します。

Relative peak height threshold

1 番シグナルが強いピークとの相対比です。値を下げるとより小さな ピークをデータとして検出します。 通常はデフォルトの値を使用します。 z Identify STR Alleles STR ローカスタグを使用して アリルを同定するときはチェ ックします z SNP Analysis SNP 解析をするときにチェッ クします

(7)

Analysis Methodのタブを選択します。 使用したサイズスタンダードを選択し ます。 検量線の引き方を設定します サイズスタンダード-400 → Cubic サイズスタンダード-600 → Quartic サイズスタンダード-80 → Linear 各種サイズスタンダードのラダーは以下のとおりです。 D1(赤)にて標識されています。 サイズスタンダード-400 60, 70, 80, 90, 100, 120, 140, 160, 180, 190, 200, 220, 240, 260, 280, 300, 320, 340, 360, 380, 400, 420 サイズスタンダード-600 60, 70, 80, 90, 100, 120, 140, 160, 180, 190, 200, 220, 240, 260, 280, 300, 320, 340, 360, 380, 400, 420, 440, 460, 480, 500, 520, 540, 560, 580, 600, 620, 640 サイズスタンダード-80 13, 88

(8)

Advancedのタブを選択します。

蛍光色素によって生じる移動度の相違を補正するパラメータを入力します。

Nextをクリックします。

Analyzeをクリックし、Finishをクリックします。 Result Set Viewに解析データのリストが表示されます。

別名で保存します z PA ver.1 サイズスタンダード 400、600 のフラグメント解析の時 z SNP Ver.2 SNP 解析の時

(9)

4

4

Result Set Viewからのデータ表示方法はSingle Result、Stack Graph、Overlayがあります。 Result Set Viewを表示します。

Single Resultの表示

① 表示したいデータをハイライトします。

② 右クリックでShow Single Resultを選択します。

Stacked Graphの表示

① 表示したいデータをハイライトします。

② 右クリックでShow Stacked Graphを選択します。

Overlay Graphの表示 個々のデータの 様々な情報を確認 することができま す。 複数のデータを比 較することができ ます。 検出されたピーク の再現性を確認す ることができま す。

(10)

Fragment Listではすべてのフラグメントデータを表示することができます。 Fragment Listを表示します。

(11)

5

5

E

E

x

x

c

c

l

l

u

u

s

s

i

i

o

o

n

n

F

F

i

i

l

l

t

t

e

e

r

r

Exclusion Filterを使うことで、たくさんのデータから必要なデータを抽出することができます。 Exclusion FilterはResult Set ViewとFragment List両方で設定することができます。

Exclusion Filterの種類は多数ありますがここではよく使用するFilterをご紹介します。その他の FilterについてはソフトウエアのHelpをご参照ください。

Result set viewのExclusion Filter

Name Operator* 結果

Analysis outcome not=Pass 解析結果のStatusがPass 以外のデータを除外 Current noise(%) >2 電流値のノイズが大きいものを除外

Current Chng(%/min) <-0.2 電流値の下降率が大きいものを除外

Number pks D4 >, < D4のピーク数が推定より多い/少ないデータを除外 Channel 1 overrange =yes D1のシグナルが振り切っているデータを除外

Size cal corr coef <0.9 サイズスタンダードのカーブフィットの低いデータを除外 No. siz stds missed > 検出されないサイズスタンダードが一定数より多いデータを除外 Fragment ListのExclusion Filter

Name Operator* 結果

Dye =D1

Not = D4

D1のデータを除外 D4以外のデータを除外

Est frag size (nt) >,< 目的のピークサイズより大きい/小さいピークのデータを除外 Allele ID =Blank Allele IDがついていないピークを除外

Pk clstr ht ordr Not = 1 クラスターを構成しているピークの中で1番高いピーク以外のデ ータを除外

Pk height (rfu) < ピークの高さ(rfu)で除外 *記載されている値は例です。

Result Set View, Fragment List の画 面に Exclusion Filter があります。 Name, Operator, Value を入力してくだ さい。

Result Set View, Fragment List の画 面に Exclusion Filter があります。 Name, Operator, Value を入力してくだ さい。

Result Set View, Fragment List の画 面に Exclusion Filter があります。 Name, Operator, Value を入力してくだ さい。

Result Set View, Fragment List の画 面に Exclusion Filter があります。 Name, Operator, Value を入力してくだ さい。

Result Set View, Fragment List の両 方の画面にそれぞれ Exclusion Filter があります。Name, Operator, Value を 入力してください。 フィルターを削除する場合は、ハイ ライトし右クリックで Remove Filter を選択してください。 設定したフィルターを別名で保存する ことができます。保存したフィルター はプルダウンメニューから呼び出すこ とができます。 設定したフィルターを別名で保存する ことができます。保存したフィルター はプルダウンメニューから呼び出すこ とができます。 設定したフィルターを別名で保存する ことができます。保存したフィルター はプルダウンメニューから呼び出すこ とができます。 チェックを入れると Exclude されたデ ータを表示します。Exclude されたデー タはハイライトされています。

(12)

6

6

Single Result ViewまたはStacked Graphを開けて解析データを確認します。Exclusion Filterで除外でき なかったピークや、反対に必要なピークが除外されてしまった場合、マニュアルで個々のピークデータを 追加、除外することができます。 ① 目的のフラグメントピークをクリックします。クリックしたピークはボックスに囲まれます。ボッ クスで囲まれないピークはデータとして認識するための条件を満たしていないので、データとして 採用することはできません。 ② ボックスが選択されている状態で右クリックします。 Include チェックを入れると選択されているピークが データとして採用されます。はずすとデータ を除外します。 Edit Annotation Allele ID などマニュアルで入力します。 Copy フラグメント解析結果をコピーし、ワードな どに張り付けることができます。

(13)

7

7

S

S

t

t

u

u

d

d

y

y

8

8

Studyは解析したデータをグループとして保存します。保存されたStudyはFile/ OpenのStudyのウインドウ に表示されます。データを蓄積して、一つのグループとして管理するのに便利です。 ツールバー/File Studyについて

New Study 新規Studyを作成します Open Study 既存のStudyを開きます

Manage Study StudyのRename、削除を行います データの追加

Add Raw Data to Study Raw DataをStudyに解析後追加します Add Result Data to Study 解析済みデータをStudyに追加します

データの除外(Exclude)、削除(Remove)

Result Set Viewから行います。ExcludeまたはRemoveしたいデータをハイライ トし、右クリックでExclude resultsまたはRemove from Studyを選択します。 z Exclude:除外はStudyのデータの一つとして存在しますが、データとして

は使用しない状態です。

z Remove:削除はStudyのデータから完全に削除し、Studyの中に存在しない データとなります。

Result Set View以外のウインドウを閉じます。 再解析したいデータをハイライトします。 右クリックしReanalyze Resultsを選択します。

再解析のオプション From Sample Data

Raw Dataから解析を行い、既存のデータを再解析したデータへ置き換えます。 Using New Parameter

解析パラメータを変えて解析を行います。 Using Additional/Edited Locus Tags

(14)

9

9

-

-

S

S

T

T

R

R

/

/

S

S

N

N

P

P

STR解析やSNP解析で検出されたフラグメントのアリル同定、SNP判定を同時に解析することができます。 STR解析 ① GeneralのタブのIdentify STR Allelesにチェックをいれます ② STRのタブを選択します。 ③ Availableのボックスからローカスタグを選択し、Selectのボックスに移します。(ローカスタグの 作成方法は後述) ④ 別名で保存します。ローカスタグを組み込んだ解析パラメータを使用すると、サイズコールとアリ ル同定を同時に行います。 SNP解析 ① GeneralのタブのSNP Analysisにチェックをいれます ② SNPのタブを選択します。 ③ AvailableのボックスからSNPタグを選択し、Selectのボックスに移します。(SNPタグの作成方法は 後述) ④ 別名で保存します。SNPタグを組み込んだ解析パラメータを使用すると、サイズコールとSNP判定を 同時に行います。

(15)

1

1

0

0

S

S

T

T

R

R

ローカスタグはビニング解析の結果から作成します。ビニング解析を行うために同じSTRローカスのデータ を少なくとも事前に10個取得しておく必要があります。 ① メインメニューからFragmentsを開き、Raw Dataを選択します。 ② 解析するデータを選択し、Selectedに移動しNextをクリックします。 ③ 解析パラメータを選択し、Nextをクリックします。 ④ Finishをクリックすると、サイズコールされたデータのリストが表示されます。 ⑤ Study ExplorerのBinningをハイライト、右クリックしNewを選択し ます。 ⑥ ビニングのパラメータを入力しNextをクリックします。 Dye:使用している Dye を選択します。

Fragment Range From:検出されるフラグメントサイズ の範囲を入力します。

Maximum Bin Width:ビンの幅を設定します。最大 1 で す。

Repeat Unit Length:繰返配列ユニット数を入力します Allele Naming Convention:アリル ID の表示方法を選 択します

Nominal size- フラグメントの正数値化した検出サイズ Alphabetic- 連続したアルファベット

(16)

⑧ 必要がある場合Alleleを編集します。 Phase Shift:マジョリティのピークが 作成したビンから外れている場合使用 します。+1 するとビンが 1 ベース大き いほうへ移動します。

Show Phantom Bins:繰返し数計算され るビンの間にあるビンを表示します。 変異で生じるアリルを作成するのに有 用です。

Trace View:Bin View にあるシ グナルをクリックするとそのフ ラグメントデータが表示されま す。データを右クリックし Show result names を選択するとサン プル名が表示されます。 アリルの追加

1) Show Phantom Bin にチェックをい れます 2) 目的のビンをクリックします。 3) 右クリックで、Create Allele を選 択します。 アリルの削除 1) 目的のアリルをハイライトしま す。 2) 右クリックで、Remove Allele を選択します。 アリルの追加 1) 加えたいアリルサイズの前後ど ちらかのアリルをハイライトし ます。 2) 右クリックで、Add Shorter/Longer Allele を選択 します。 ビンの中心サイズの変更:Apparent Size の中心サイズを編集します。

(17)

⑨ Nextをクリックします。

⑩ Locus Tag とLocus Nameに同じ名称を入力します。

⑪ Locus Tag はAnalysis parameterから編集することができます。

STRプライマーセットを使用した解析についてはGenomeLab Human STR Primer Setを使用してのジェノタイ プサマリーの作成をご参照ください。

(18)

1

1

S

S

N

N

P

P

L

L

o

o

c

c

u

u

s

s

SNPのLocus Tagを作成します。 ① 解析パラメータを開き、SNP Locus Tagsを選択します。 ② New Locusをクリックします。 SNP解析の詳細についてはSNP解析チュートリアルマニュアルをご覧下さい。 New Locus 新しい Locus を作成 Edit Locus 既存の Locus を編集

Locus Tag

SNP Locus の名称を入力。解析パラメータの SNP Locus Tags に表示されます。

Locus Name

Locus Tag と同じく入力します。 Apparent Fragment Size

検出されるフラグメントサイズを入力します。

検出が予測されている SNP 以外は Delete で 削除します。

(19)

1

1

2

2

A

A

F

F

L

L

P

P

-

-

① Study ExplorerのAFLPsをハイライト/右クリックでNewを選択します。 ② サンプルごとにピークの有無が表示されます。 Dye デフォルトのパラメータを 使用します。 使用していない蛍光色素の チェックをはずします。

Maximum Bin Width:設定値は最大 1 です。

Y Threshold:値を上げるとピークハイトの低いデータを除外します。

Exclude Fully Populated Peak:すべてのサンプルにピークが存在するビンを除外します。 Exclude Sample w/o Qualifying Peaks:解析パラメータに合致しないピークが存在するサン プルを除外します。 Y Threshold ピークの高さの Threshold を設定し ます。数値を上げると高さが低いピ ークは除外されます。 Fragment Count Bin に存在するピークの数を表示 Binary Presence Bin にピークが存在するか 0/1 で表 示 Fragment(s) Max Y Bin に存在するピークの高さを表示 Sample Axis AFLP テーブルの表示方 向を変更します。

(20)

1

1

3

3

/

/

③ AFLPバイナリー表示データをエクスポートします。 File/Export AFLPを選択します。

Text File (*.csv): Excelで開くことができます。

NTSYSpc(*.nts): NTSYSpcソフトウエア(3rd party software)に直接インポートできます。

CEQファイルフォーマット:サンプルに関するすべてのデータが含まれます。 ① ツールバーからFile/Export Resultsを選択します。

② Exportするファイルを選択し、Selectedのボックスに移しNextをクリックします。 ③ Save asをクリックし、ファイルフォーマットからCEQを選択します。

④ Remove CEQ Tracking SuffixとResolve Filename ConflictのチェックをはずしますFinishを クリックします。 ⑤ サンプルごと独立したファイルがエクスポートされます。 テキストファイルフォーマット:フラグメントリストがエクスポートされます。 ① ツールバーからFile/Export Resultsを選択します。 ② Exportするファイルを選択し、Selectedのボックスに移しNextをクリックします。 ③ Save asをクリックし、ファイルフォーマットからを選択します。

④ Remove CEQ Tracking SuffixとResolve Filename ConflictのチェックをはずしFinishをクリ ックします。

⑤ サンプルごと独立したファイルがエクスポートされます。

CSVファイルフォーマット:Studyにあるすべてのフラグメントリストが1つのファイルでエクスポー トされます。

① ツールバーからFile/ Export Fragments/Genotypes…を選択します。 ② ファイルフォーマットからCSVを選択し,Filenameを入力して保存します。 CEQファイルフォーマットのインポート

① データベースを開き、インポートしたいデータベースのプロジェクト(Defaultなど)を選択 します。

(21)

1

1

4

4

Working Database すべてのデータはWorking Databaseに保存されます。ワーキングデータベースを変更する場合はす べてのモジュールを閉じてください。 Working Databaseの変更 ① データベースを開きます。 ② Working Databaseにしたいデータベースをハイライトし右クリックします。 ③ Set as Working Databaseを選択します。

新しいデータベースの作成

① ツールバーのTools/ New databaseを選択します。

② データベースの名称を入力し、Set as Working databaseを選択します。 データベースの削除

① 削除したいデータベースをハイライトします。 ② ツールバーのTools/ Delete databaseを選択します。 Project

データベースの中でデータを振り分けて保存することができます。 ① ワーキングデータベースをハイライトします。

② 右クリックし、New Projectを選択します。

(22)

 

参照

関連したドキュメント

In addition, inhomogeneous distributions of the σ phase and grain size could be observed in the microstructure of the stem, resulting from the inhomogeneous distributions of

REC DATA MASTER L to SD CARD REC DATA MASTER R to SD CARD VOLUME SOUND

回転に対応したアプリを表示中に本機の向きを変えると、 が表 示されます。 をタップすると、縦画面/横画面に切り替わりま

シートの入力方法について シート内の【入力例】に基づいて以下の項目について、入力してください。 ・住宅の名称 ・住宅の所在地

サンプル 入力列 A、B、C、D のいずれかに指定した値「東京」が含まれている場合、「含む判定」フラグに True を

パキロビッドパックを処方入力の上、 F8特殊指示 →「(治)」 の列に 「1:する」 を入力して F9更新 を押下してください。.. 備考欄に「治」と登録されます。

大阪府では、これまで大切にしてきた、子ども一人ひとりが違いを認め合いそれぞれの力

使用済自動車に搭載されているエアコンディショナーに冷媒としてフロン類が含まれている かどうかを確認する次の体制を記入してください。 (1又は2に○印をつけてください。 )