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液相等電点泳動を用いた二次元泳動法の活用

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Academic year: 2021

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(1)電気泳動 第 58 巻 第 2 号,pp. 56-58,2014 年 doi:10.2198/sbk.58.56. 〔特集:最新の電気泳動技術〕. 液相等電点泳動を用いた二次元泳動法の活用 杉山 康憲*・片山 将一・馬場 裕美・末吉 紀行・亀下. 勇 . 香川大学農学部応用生物科学科 Application of two-dimensional electrophoresis using liquid-phase isoelectric focusing Yasunori Sugiyama, Syouichi Katayama, Hiromi Baba, Noriyuki Sueyoshi, Isamu Kameshita *Corresponding Author E-mail: [email protected]. (受付 2014 年 6 月 3 日,受理 2014 年 6 月 10 日) はじめに 近年, プロテオミクス研究が盛んになり, タンパク質を網 羅的に解析する手法が数多く開発されてきた. その中でも, 固 定 化 pH 勾 配 ゲ ル を 用 い た 等 電 点 電 気 泳 動 と SDS-PAGE を組み合わせた二次元電気泳動法はタンパク 質の分離・検出において非常に強力なツールの一つとし て用いられている. このような背景の中で我々は, 二次元電気泳動法にお ける一次元目の泳動に MicroRotofor を用いた液相等電点 分離を利用することによって, タンパク質のリン酸化・脱リン 酸化解析における新たな手法の開発を行ってきた. 本稿 では, これまでに開発してきたプロテインキナーゼの発現 パターン解析法とプロテインキナーゼの基質探索法, なら. 図 1 MicroRotofor を用いた二次元電気泳動. ラット精巣抽出液中のタンパク質を SDS-PAGE (A) ならび に MicroRotofor/SDS-PAGE (B) で分離し, マルチ PK 抗. びにホスファターゼの活性プロファイル法について紹介す る.. 体を用いたウエスタンブロットにより解析した.. MicroRotofor/SDS-PAGE 二次元泳動を用いた. するために, 一次元目にタンパク質を溶液中で等電点分. プロテインキナーゼの発現パターン解析 . 離できる MicroRotofor を用いた. MicroRotofor はポリエステ. 我々は, プロテインキナーゼの全体像に焦点を当てた解 析を行うため, プロテインキナーゼを網羅的に検出できる. ル膜で 10 の区画に分けられた試料チャンバーからなり,. モノクローナル抗体(マルチ PK 抗体)を作製した 1), 2). マル. ラット精巣抽出液中のタンパク質を変性条件下(urea およ. チ PK 抗体は, プロテインキナーゼの触媒領域を構成する. び thiourea 存在下)にて一次元目として MicroRotofor を用. サブドメイン VIB と呼ばれる高度に保存された配列を認識. いて液相等電点分離後,タンパク質を回収し, 二次元目と. する反応特異性の広い抗体である. まず, この抗体を用い たプロテインキナーゼの発現パターン解析を行った. 一次. して SDS-PAGE を行いマルチ PK 抗体を用いたウェスタン ブロットにて解析した. その結果, 図 1B に示すように同一. 元の SDS-PAGE によりラット精巣抽出液中のタンパク質を. 分子量で pI 値が異なるキナーゼが異なるレーンに検出さ. 分離後, マルチ PK 抗体を用いたウェスタンブロット解析を 行ったところ多数のキナーゼバンドを検出することができ. れ, 高分子キナーゼも効率よく検出された 3). この結果は,. た(図 1A). 次に, 固定化 pH 勾配ゲルを用いた二次元電. り, プロテインキナーゼを効率よく分離・回収でき, プロテ. 気泳動解析を行ったが, 約 100 kDa 以上のタンパク質を効. インキナーゼの発現パターン解析に本手法が有用である. 率よく検出できないという問題点が生じた. この問題を解決. ことを示す.. 各区画をタンパク質が自由に透過できるようになっている.. MicroRotofor を用いた液相等電点泳動を利用することによ. 56. . 56.

(2) 電気泳動 第 58 巻 第 2 号,2014 年. CDKL5 の非常によい基質となることが明らかとなった 5). プロテインキナーゼの基質探索法への応用 . 我々は同様の手法を用いることにより, これまでに. 細胞機能は多様なリン酸化シグナル経路によって制御. Doublecortin-like protein kinase (DCLK) の 基 質 と し て. されていることが知られている. そのため, プロテインキナ. Synapsin II, ミ ヤ コ グ サ Nuclear Dbf2-related kinase. ーゼの基質を同定するための様々な手法が開発され, 多. homolog (PKL01)の基質として Histone を同定した 6, 7). これ. くのプロテインキナーゼの基質が同定されてきた. しかし,. らの結果は, 液相等電点分離による基質タンパク質の分画. プロテインキナーゼの生理的な基質には未同定なものが. がプロテインキナーゼの基質探索において非常に有効な. 多く残されている. そこで我々は, 組織抽出液中のタンパ ク質を MicroRotofor を用いて分画し, プロテインキナーゼ. 手法であることを意味する.. の基質とすることでより多くの基質をみいだせる手法を考. Native MicroRotofor/Native-PAGE 二次元泳動. 4). 案した .. を用いたホスファターゼ活性の検出 細胞内のリン酸化シグナルはプロテインキナーゼによる リン酸化とプロテインホスファターゼによる脱リン酸化のバ ランスで成り立っている. このリン酸化・脱リン酸化の不均 衡は様々な疾病の原因に関与することが知られている. そ のため, プロテインホスファターゼの制御機構を調べる手 法の開発が望まれている. このような背景の中で我々は, 様々なホスファターゼの蛍光発生基質となる 4-methylumbelliferyl phosphate (MUP)を用いたゲル内での ホスファターゼ活性の検出法を開発した 8). このゲル内ホス ファターゼ活性検出法と MicroRotofor を組み合わせた新し いホスファターゼの活性プロファイル法について概説する. Native MicroRotofor/Native-PAGE 二次元泳動によるゲ ル内ホスファターゼ活性検出法 9)は 3 つのステップからなる.. 図 2 CDKL5 の内在性基質の検出.. 第 1 ステップとして, タンパク質試料を非変性条件下にて. MicroRotofor を用いて分離したマウス脳抽出液の各画 分と CDKL5 を[γ-32P]ATP 存在下でインキュベートし, SDS-PAGE で分離後, オートラジオグラフィーにて検出. MicroRotofor を用いて液相等電点分離する. 第 2 ステップ では, 等電点分離した試料を二次元目として. した. 黒枠は Amph1 のリン酸化バンドを示す. Native-PAGE にて分離する. 最後に, MUP を基質としたゲ. . ル内ホスファターゼアッセイを行い, 365 nm で励起すること によりホスファターゼ活性の蛍光バンドを検出する. 図 3 に. Cyclin-dependent kinase-like 5 (CDKL5)は主に脳に発 現する Ser/Thr キナーゼであり, レット症候群という女児に 起こる進行性の神経疾患の原因遺伝子の一つである. し かしながら, CDKL5 の活性化機構や基質についてはほと んど知られていない. そこで, CDKL5 の生理的な基質を探 索するため MicroRotofor を利用した. 内在性のキナーゼを 失活させるためマウス脳抽出液を変性条件下におき, MicroRotofor を用いてタンパク質を液相等電点分離した. 得られた各画分を基質として CDKL5 を用いてキナーゼア ッセイを行い, オートラジオグラフィーにて基質タンパク質 の検出を行った. MicroRotofor で分離する前の粗抽出液を 基質にした場合には基質タンパク質は検出されなかった が(図2, レーン:Input), 分離後のフラクション 2 において 120 kDa の基質タンパク質が検出された. 質量分析装置を. 図 3 プロテインホスファターゼ活性の検出 ラット脳抽出液を Native MicroRotofor/Native-PAGE で 分離し, MUP を基質としたゲル内ホスファターゼアッセ イにより検出した.. 用いた解析により, この基質タンパク質は Amphiphysin1 (Amph1)と同定された. キナーゼアッセイにより Amph1 は 57. . 57.

(3) 電気泳動 第 58 巻 第 2 号,2014 年. 示すように,実際にこの手法を用いてラット脳のホスファタ. zebrafish doublecortin-like protein kinase using a. ーゼ活性を検出すると, 異なる画分から 10 本以上の蛍光. highly active truncation mutant. J Biochem. 2010;. バンドが検出された. この結果は, 本手法を用いることによ. 147:711-722.. って, 様々な状況下における細胞内の多様なホスファター. 7) Kameshita I, Shimomura S, Nishio K et al.. ゼの活性をプロファイルすることが可能であることを示唆す. Expression and characterization of PKL01, an Ndr kinase homolog in Lotus japonicus. J Biochem.. る.. 2010;147:799-807. 8) Kameshita I, Baba H, Umeda Y, Sueyoshi N. In-gel. おわりに . protein. phosphatase. assay. using. fluorogenic. substrates. Anal Biochem. 2010;400: 118-122.. MicroRotofor を用いた液相等電点泳動を利用するとタン. 9) Baba H, Masuda Y, Sueyoshi N, Kameshita I. In-gel. パク質の効率の良い分離・回収を簡便に行うことができる. 本稿では, この手法を二次元電気泳動法に応用すること. phosphatase. により, プロテインキナーゼおよびプロテインホスファター. dimensional electrophoresis. J Biochem. 2012;152:. ゼを介したリン酸化研究への応用例を紹介した. 液相等電. 557-563.. 点分離を利用した二次元電気泳動法は, リン酸化研究だ けでなく様々な他の研究分野においても広く応用される可 能性を秘めていると考えられる. 今後, 本手法がより幅広 い分野で利用されることによりその応用範囲が益々拡大さ れていくことを願う. 文 献 1) Kameshita I, Tsuge T, Kinashi T et al. A new approach for the detection of multiple protein kinases using monoclonal antibodies directed to the highly conserved region of protein kinases. Anal Biochem. 2003;322:215-224. 2) Sugiyama Y, Sueyoshi N, Shigeri Y et al. Generation and application of a monoclonal antibody that detects a wide variety of protein tyrosine kinases. Anal Biochem. 2005;347: 112-120. 3) Sugiyama Y, Sueyoshi N, Kameshita I. Twodimensional expression pattern analysis of protein kinases. after. separation. MicroRotofor/SDS–PAGE.. Anal. by Biochem.. 2006;359:271-273. 4) Senga Y, Nagamine T, Sekiguchi M et al. Detection of protein kinase substrates in tissue extracts after separation by isoelectric focusing. Anal Biochem. 2011:408:345-347. 5) Sekiguchi M, Katayama S, Hatano N et al. Identification of amphiphysin 1 as an endogenous substrate for CDKL5, a protein kinase associated with X-linked neurodevelopmental disorder. Arch Biochem Biophys. 2013;535:257-267. 6) Shimomura S, Nagamine T, Hatano N et al. Identification. of. an. endogenous. substrate. of 58. . 58. assay. using. non-denaturing. two-.

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