Phase 1
Phase 2
Phase 3
Fomic acid
“Toxic” Formaldehyde (HCHO)
Indoor environment
Glutathione-dependent formaldehyde dehydrogenase
(FALDH)
Human liver
S- formylglutathione hydrolase
Formate dehydrogenase (FDH)
CO2
Phase 4
“Non-Toxic” CO
2図27．ホルムアルデヒド代謝経路の模式図．
この図はUotila and Koivusalo (1974a, b)に基づいて小林が作図．
151
D A B
C
図28．本研究で用いた野生種トマトの植物体（左側：葉，右側：果実）．
A，B：L. (S.) pennellii LA0716，C，D：L. chilense TOMATO(WILD)94．
152
Fresh foliage explant
Wrapping the parafilm
Screw vial
Distilled water
図29．本実験でHCHOあるいはCO2濃度の測定用に調整された
野生種トマトの茎葉．
153
Fresh foliage Gas sampling pump
HCHO or CO2 detector tube
Glass container
Wrapping the parafilm Detector
tube passage
site HCHO
injection site
図30．HCHOあるいはCO2濃度の測定装置．
前実験によりHCHOが測定装置から生じないことを確認した．装置は800ml ガラス容器から作製（星硝株式会社，東京，日本）．シリコン製のキャップ とチューブをHCHO注入部位と検知管通過部位に取付け，空気の漏れを防 止．各々部位でのガラス容器からの空気の漏れを確実に防ぐためにビニル テープあるいはクリップを取り付けた．密閉したガラス容器に設置した茎葉 に調整した5ppmのHCHOを外部より処理した．
154
0 1 2 3 4 5 6
0 30 60 90 120
HCHOconcentration (ppm)
Time of HCHO after treatment (minute) LA0716
TOMATO(WILD)94
Glass container (without a fresh foliage)
a
a b
a
a a a
b b
b
図31．異なる野生種トマトのけるガラス容器内のHCHO濃度の推移．
図中の縦棒は各平均値からの標準誤差を示す．ガラス容器は茎葉を入れずに 処理されたHCHOのみがある．異なる文字はMann-Whitney U検定による 野生種トマト間の有意差を示す（P<0.05）．
155
0 100 200 300 400 500 600 700 800 900
0 30 60 90 120
CO2concentration (ppm)
Time of HCHO after treatment (minute) LA0716 (+HCHO)
TOMATO(WILD)94 (+HCHO) LA0716 (-HCHO)
TOMATO(WILD)94 (-HCHO)
Glass container (without a fresh foliage)
a
a a
a b
a
a a
a b
a a a
a
a a
b a a a
図32．異なる野生種トマトのけるガラス容器内のCO2濃度の推移．
図中の縦棒は各平均値からの標準誤差を示す．茎葉はHCHOが処理された
（グラフ内で＋HCHOと示した）とHCHOが処理されなかった（グラフ 内で－HCHOと示した）．ガラス容器は茎葉を入れずに処理されたHCHO のみである．異なる文字はSteel-Dwass検定による野生種トマト間の有意差 を示す（P<0.05）．
156
GSH FALDH
L. (S.) pennellii LA0716
FDH 0
30
60
90
120 Time of HCHO after treatment (min.)
GSH FALDH FDH
L. (S.) pennellii LA0716 without substrate 0
120
図33．L. (S.) pennellii LA0716の葉肉組織での代謝関連物質および酵素活性の局在性
と推移．
GSHの局在性はMCBにより青緑色の蛍光を特に柵状組織と海綿状組織の 細胞において発生させた．FALDHとFDH活性部位は強い青紫色に染色され る．写真の黄色の枠がGSHの検出，FALDHおよびFDH活性で最も強い 活性が認められた時間を示す．スケールバーは100 µmである．
157
L. chilense TOMATO (WILD)94
0
30
60
90
120
FDH FALDH
GSH
Time of HCHO after treatment (min.)
FDH
GSH FALDH
0
L. chilense TOMATO (WILD)94 without substrate
120
図34．L. chilense TOMATO(WILD)94の葉肉組織での代謝関連物質および酵素活性
の局在性と推移．
GSHの局在性，FALDHとFDH活性部位はLA0716のように柵状組織と 海綿状組織の細胞に認められなかった．スケールバーは100 µmである．
158
図35．ノハナショウブの花の構造と名称．
外花被
アイ（蜜標）
ハロー
内花被
花茎 花柱枝 ずい弁
159
図36．ノハナショウブの花における変異．
A：花色変異（濃味赤紫色），B：花色変異（ピンク色），
C：花柱枝変異（白芯）．
B A
C
160
図37．花器官のアイが目立つハナショウブの花容.
上：‘春の海’，下：‘連城の璧’．
161
図38．ノハナショウブ以外のアヤメ科植物の花容．
上：外花被のアイ部分が白色に尖るカキツバタ（I. laevigata）と下：アイ部分 が縞目模様となるアヤメ（I. sanguinea）．
162
図39．青森県種差海岸自生のノハナショウブ．
外花被のアイ部分が黄色となる標準個体（A）と紫色となる変異個体（B），
自生地にて撮影．
A B
163
図40．花器官の発達段階．
a，b：発達段階初期，c，d：発達段階中期，e：完全な花器官．
164
図41．本学温室で開花した青森県種差海岸自生のノハナショウブ．
標準個体の黄色アイ（A）と変異個体の紫アイ（B）．
A B
165
図42．外花被片の模式図と横断切片の作成部位．
アイ
外 花 被 横
断 切 片 作 成 部 位
外
花
被
アイ
166
標準個体の黄色アイ
a b
c d
変異個体の紫アイ
図43．標準個体の黄色アイ（a，b）と変異個体の紫アイ（c，d）の
外花被片の表面構造．
a，c：アイ，b，d：外花被先端．スケールバーは500 µm（filled）と
200 µm（open）を示す．
167
アイ 外花被先端側
a
b
図44．標準個体の黄色アイ（a）と変異個体の紫アイ（b）の外花被片の組織構造．
スケールバーは500 µmを示す．
168
標準個体の黄色アイ
変異個体の紫アイ
a b c
d e f
j
図45．標準個体の黄色アイ（a-c）と変異個体の紫アイ（d-f）の外花被片を構成する
細胞形状と色素分布．
a，d：アイ，b，e：ハロー，c，f：外花被先端．矢印は表皮細胞を示す．
スケールバーは200 µmを示す．
169
図46．変異個体の紫アイ（e，f），アヤメ科植物であるカキツバタ（a，b）および
アヤメ（c，d）の外花被のアイ部分の表面の比較．
田淵ら（2008）より写真を引用 田淵ら（2008）より写真を引用
変異個体の紫アイ アヤメ（I.sanguinea）
カキツバタ（I. laevigata）
a b
c d
e f
170
‘フレンシャムレモン’
‘マーブルグレイ’
a b
c d
図47．センテッド・ゼラニウムの花とその腺毛．
シトラールの局在部位は青紫色に染色される．スケールバーは50 µmを示す．
171
図48．トマト果実の果実構造（左：2心室，右：多心室）．
A：外果皮，B：中果皮，C：内果皮，D：胎座，E：子室．
A
B
C
D
E
172
図49．トマト果実の組織構造と外果皮の構造（左：果肉，右：外果皮拡大）．
A：外果皮，B：中果皮，C：内果皮，D：表皮，E：下皮．
A
B
C
D E
173
図50．L. cheesmanii（A，D，E）と L. cheesmanii f. minor（B，C，F-H）の完熟果実
（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：LA0166，B：LA0438，C：LA0530，D：LA1037，E：LA1039，F：LA1410，
G：LA1452，H：LA1627．
A B
C D
E F
G H
174
図51．L. esculentum var. cerasiforme（A–C）とL. pimpinellifolium（D，E）の完熟果実
（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：LA1049，B：LA1312，C：LA1702，D：LA0722，E：LA3123．
A B
C D
E
175
図52．L. chilenseの完熟果実（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：LA1930，B：LA1958，C：LA1959，D：LA1969，E：LA1972，F：LA2748，
G：LA2880，H：TOMATO(WILD)94．
A B
C D
E F
G H
176
図53．L. chmielewskii（A），L. hirsutum（B）およびL. parviflorum（C，D）の 完熟果実
（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：LA2663，B：LA1777，C：LA0247，D：LA2193．
A B
C D
177
図54．L. peruvianumの完熟果実（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：LA103，B：LA0371，C：LA0441，D：LA1278，E：LA1473，F：LA2744．
A B
C D
E F
178
図55．L. (S.) pennellii（A，B），S. juglandifolium（C），S. lycopersicoides（D，E）
およびS. ochranthum（F）の完熟果実（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：LA0750，B：LA1302，C：LA3325，D：LA1991，E：LA2385，F：LA2682．
A B
C D
E F
179
図56．栽培種トマトの完熟果実（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：‘桃太郎’，B：‘ファースト’，C：‘なつのしゅん’，D：‘にたきこま’，
E：‘リコボール’ ．
A B
C D
E
180
図57．栽培種トマトの完熟果実（左：果実外観，右：果実横断面）．
A：‘Alcobaca’，B：‘Indigo Rose’，C：‘LA1996’，D：‘Never ripe’， E：‘Poma Amoris Minora Rutea’，F：‘Tangerine’，G：‘White Wonder’ ．
A B
C D
E F
G
181
図58．L. cheesmani LA0166の果実構造と色素分布．
A B
C D
182
図59． L. cheesmanii f. minor LA0438の果実構造と色素分布．
A
F
B
C D
183
図60． L. cheesmanii f. minor LA0530の果実構造と色素分布．
A B
C D
G
E F
184
A B
C D
E
図61．L. cheesmani LA1037の果実構造と色素分布．
185
図62．L. cheesmani LA1039の果実構造と色素分布．
A
C
B
D
186
図63．L. cheesmanii f. minor LA1410果実構造と色素分布．
A B
E
C D
187
図64．L. cheesmanii f. minor LA1452果実構造と色素分布．
A B
C D
E
188
図65．L. cheesmanii f. minor LA1627果実構造と色素分布．
B
D A
C
E
189
図66．L. esculentum var. cerasiforme LA1049の果実構造と色素分布．
A B
C D
E F
G
190
図67．L. esculentum var. cerasiforme LA1312の果実構造と色素分布．
A B
C D
E
191
図68．L. esculentum var. cerasiforme LA1702の果実構造と色素分布．
A B
C D
192
図69．L. pimpinellifolium LA0722の果実構造と色素分布．
A B
C D
193
図70．L. pimpinellifolium LA3123の果実構造と色素分布．
A B
C D
194 図71．L. chilense LA1930の果実構造と色素分布．
A
C
E
B
D
F
195 図72．L. chilense LA1958の果実構造と色素分布．
B
D A
C
E
196 図73．L. chilense LA1959の果実構造と色素分布．
A B
C D
197 図74．L. chilense LA1969の果実構造と色素分布．
A B
C D
E
198 図75．L. chilense LA1972の果実構造と色素分布．
A
C
B
D
199 図76．L. chilense LA2748の果実構造と色素分布．
A B
C D