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東京都健康安全研究センター 研究年報59号

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東京都健康安全研究センター研究年報 第59号 別刷 2008

T細胞依存性抗体産生の検査方法の検討―ELISA法とELISPOT法の比較―

山口敦美,藤谷知子,大橋則雄,中江大,小縣昭夫

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* 東京都健康安全研究センター環境保健部生体影響研究科 169-0073 東京都新宿区百人町 3-24-1 ** 東京都健康安全研究センター環境保健部 169-0073 東京都新宿区百人町 3-24-1

T細胞依存性抗体産生の検査方法の検討―ELISA法とELISPOT法の比較―

山口敦美*,藤谷知子*,大橋則雄*,中江大**,小縣昭夫** T細胞依存性抗体産生能を測定する系を確立した.測定法はELISA法とELISPOT法を,抗原は卵白アルブミン(OVA)とヘモ シアニン(KLH)を,動物は ICRマウスとBALB/cマウスを比較した.抗原投与8日目のマウスでは,ELISA法とELISPOT法とも同程 度の感度で測定できた.しかし,ELISA法は少量の血液で測定できるため経時的に調べるには適していた.ICRマウスはOVA 100 µg,BALB/cマウスはKLH 20 µgの抗原で免役し,6-8日目の血清で測定するのが最適であった. キーワード:T細胞依存性抗体産生,ELISA法,ELISPOT法,ICRマウス,BALB/cマウス は じ め に これまでに,我々は,ICRマウスを用いて様々な化学物質の 毒性試験をおこなってきた.その中のいくつかは,胸腺の萎縮 や脾臓の肥大など免疫系に関係のある臓器に影響する結果を 得ている.化学物質が免疫毒性を持つ証拠の一つとして,化 学物質が抗体産生に影響を及ぼしているかどうかを検査する 必要がある.これまで抗体量は,血清中の抗体を測るELISA (enzyme-linked immunosorbent assay)法や赤血球を抗原とする 抗 体 産 生 細 胞 が 赤 血 球 と 反 応 し て プ ラ ー ク を 作 るPFC (plaque-forming cell)法で測定されてきた.ELISA法と類似した 方法で血清中の抗体ではなく抗体産生細胞から産生される抗 体 を 直 接 測 定 す るELISPOT (enzyme-linked immunospot assay)法1)ELISA法よりも高感度で検出できる方法として注目 されている.

この論文では,抗原の選択とELISA法とELISPOT法を検討 した.抗原は,高い抗原性を持ちT細胞依存性に抗体を産生 する卵白アルブミン(OVA)及びkeyhole limpet hemocyanin (KLH)を比較した.また,免疫反応の評価にはBALB/cマウス が用いられていることが多いので,ICRマウスとBALB/cマウス の比較検討も行った.

実験方法

1. 材料および測定機器

OVA , KLH , ウ シ ア ル ブ ミ ン (BSA) と cyclophosphamide (CYC)はSigma社,horseradish peroxidase (HRP)標識抗マウス IgM抗体はZymed社, HRP標識抗体の基質として3,3’,5, 5’-tetramethylbenzidine (TMB ) BioFX社, ABTS Tabletsは Roche社より購入した.OVAは1 mg/ml OVAと 9% AlK(SO4)2 を 1 : 1で混合しKOHでpH 6.5に調製し,PBSで3回洗浄して, 0.5 mg/mlのOVA(+alum)溶液を作成し,免疫に用いた.KLH はPBS で 0.5 mg/ml に 調 製 し て 使 用 し た . 細 胞 培 養 液 RPMI-1640, 牛胎児血清, 1M HEPES, 100 mM ピルビン 酸ナトリウム, 200 mM L-グルタミン酸, ペニシリンーストレプ ト マ イ シ ン , 2- メ ル カ プ ト エタ ノ ー ル , 非必須ア ミノ酸 は GIBCOより購入した.吸光度はマイクロプレートリーダー(サン ライズリモート,和光純薬工業社)を用いてOD405nmで測定し た. 2. 血清と細胞の調製 8-10週齢の雌ICRマウスとBALB/cマウスに抗原として1匹あ たり200 µlの20 µgか100 µgのOVA(+alum)あるいはKLHを腹腔 内投与した.対照はPBSを投与した.投与前,投与後3-8日に 尾静脈から採血し,血清を分離して,測定するまで-80°Cで保 存した.8日目には脾臓から細胞を調製した.脾臓の細胞は4 mlの0.5 % BSAを含むPBS中で,脾臓を磨りの付いたスライド グラスの磨りの部分で磨り潰した後,径57 µmのナイロンメッシュ でろ過した.1,200 rpm, 5 minで遠心して,さらに4mlの0.5% BSAを含むPBSを加えて再浮遊させ1,200 rpm, 5 minで洗浄 した.4 mlの溶血液(0.173 M Tris-HCL (pH7.65): 0.83 % NH4Cl=1:9)を加えて,室温10 minで赤血球を溶血させた.4 ml の0.5 %BSAを含むPBSで1,200 rpm, 5 minで2回洗浄して, 1.5 x 107/mlと5 x 106/mlになるように培養液(RPMI-1640, 10 % FCS, 1M HEPES (1 %v/v), 100 mMピルビン酸ナトリウ ム (1%v/v), 200 mM l-グルタミン酸(1 % v/v), ペニシリン ーストレプトマイシン (1 % v/v), 2-メルカプトエタノール (0.1 % v/v), 非必須アミノ酸(1 % v/v))に再浮遊した. 3. ELISA法 100 µg/ml (PBS) のOVAあるいはKLHを100 µlずつ96ウェ ルのプレート(FALCON)に加え,4°Cで一晩静置した後,0.05 % Tween20を含むPBS (0.05TP)で6回洗浄後,150 µlの5% BSAを含むPBSで室温1時間ブロッキングした.希釈した100 µl の血清をウェルに加えて,室温2時間静置した後,0.05TPで6 回洗浄後,HRP標識抗マウスIgM抗体を加え一時間静置, 0.05TPで6回洗浄後,基質のABTSを加えて発色させ,OD 405 nmで測定した.有意差検定はt-検定を用いた. 4. ELISPOT法 100 µg/ml (PBS)のOVAあるいはKLHを100 µlずつ96ウェル のプレートに加え,4°Cで一晩静置した後,PBSで6回洗浄後,

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Ann. Rep. Tokyo Metr. Inst. Pub. Health, 59, 2008 318 150 µl 5 % BSAを含むPBSで室温1時間ブロッキングした.抗 原投与後8日目の脾臓から調製した0.1 mlの細胞浮遊液(5 x 1051.5 x 106細胞)をOVAあるいはKLHをコートしたウェルに 加えて,5 % CO2,37°Cで4時間培養した後PBSで6回洗浄 後,HRP標識抗マウスIgM抗体を加え4°Cで一晩静置した. PBSで6回洗浄後,基質であるTMBを加えて発色させた.脾臓 細胞から産生された抗体が底面にコートしたOVAやKLHと反 応してできたスポットを倒立顕微鏡で観察,CCDカメラで画像 を取り込み,画像解析ソフトWin ROOF(三谷商事(株))でスポ ット数と面積を計測した.有意差検定はt-検定を用いた. 5. Cyclophosphamideの抗体産生抑制作用 CYCはアルキル化剤で,DNA合成を阻害する作用を持つこ とから抗悪性腫瘍剤として,抗体産生を抑制することから免疫 抑制剤として使用されている2-4)ICRマウスに100 mg/kgの CYCを1, 3, 7, 11日目に腹腔内投与した.OVA(+alum) (100 µg/匹)は7日目に腹腔内投与した.対照として,CYCの代 わりにPBSを投与し,OVA(+alum)を投与した群を用いた. CYC投与前,投与後11,14日目に採血し,ELISA法で抗体量 を測定した.14日目には脾臓細胞を分離して,ELISPOT法で 抗体産生量を測定した. 結果 1. ELISA法 図1にOVAを抗原とした時のICRマウス(A)とBALB/cマウス (B)での抗体産生量の経時変化を示す.ICRマウスとBALB/cマ ウスともOVAは投与量が20 µgより100 µgの方が抗体産生量は 多かった.100 µgでは投与6日目から抗体産生量が増加した. BALB/cマウスの方がICRマウスに比べて抗体産生量は多かっ た.図2にKLHを抗原とした時のICRマウス(A)とBALB/cマウス (B)での抗体産生量の経時変化を示す.KLHはICRマウスでは 20, 100 µgとも投与6-8日で投与前の約2倍に増加した. BALB/cマウスでは投与4日めで,20 µgでは2倍,100 µgでは3 倍に増加し,8日目では20 µgでは2.5倍,100 µgでは4倍に増 加した.すべてが統計的に有意ではないが,充分な抗体産生 が観察された. 2. ELISPOT法 図3にOVAを抗原とした時のICRマウスとBALB/cマウスでの 抗体産生のスポット数(A)と面積(B)を計算した結果を示す. ICRマウスは,OVAが20 µgで細胞数 1.5 x 106の時に面積が 増加した(p<0.05).OVAが100 µgで細胞数5 x 1051.5 x 106 時,スポット数と面積が増加した.BALB/cマウスではOVAが 100 µgで細胞数1.5 x 106の時のみスポット数と面積が増加し た. 図4にKLHを抗原とした時のICRマウスとBALB/cマウスでの 抗体産生をスポット数(A)と面積(B)で計算した結果を示した. KLHはばらつきが大きかったが,ICRマウスでは,KLHが100 µgで細胞数5 x 105の時にスポット数が増加し,細胞数1.5 x 106 の時にスポット面積が増加した.BALB/cマウスではKLHが20 µgで細胞数1.5 x 106でスポットの数と面積が増加し,KLHが 100 µg で細胞数5 x 105,1.5 x 106の時にスポット面積が増加し た. 3. Cyclophosphamideの抗体産生抑制作用 血清中の抗卵白アルブミン抗体の量をELISA法で測定した 結果を図5に示した.投与前はODで0.22が,対照のPBS/OVA では11日0.61に15日に0.40であったが,CYC/OVAではそれぞ れ0.23と0.17と減少した.ELISPOT法では細胞数が5 x 105の場 合には効果が明らかではなかったが,細胞数が1.5 x 106の時 はCYC/OVAではスポット数は減少,スポットの面積も減少傾向 を示した(図6) . 考察 T細胞依存性の抗体産生を評価する方法としてELISA法と ELISPOT法を比較した.どちらの測定法でも,同程度に,抗原 特異的IgM抗体の増加を観察できた.免疫抑制剤であるCYC の前投与で抗原特異的IgM抗体が減少したことから,T細胞依 存性抗体産生を反映していることが確認された. ELISA法より, 単一細胞レベルで検出可能であるELISPOT法の方が,感度が 高いといわれているが,今回8日目のマウスのみの結果ではあ るが,ELISPOT法がELISA法に比べて感度が著しく優れてい るという結果は得られなかった.抗体産生量は,ELISA法では BALB/cマウスの方が高め,ELISPOT法ではICRマウスの方が 高めであったが,理由は不明である.どちらの場合も,少なくと も 6 日 以 降 に 検 査 を 行 え ば , 抗 体 が 測 定 で き た . し か し , ELISA法は少量の血液で測定できるので,経時的に調べるの に適している.それゆえ,T細胞依存性抗体産生能の評価は, ICR マ ウ ス で は OVA(+alum) 100 µg , BALB/c マ ウ ス で は KLH20 µgの抗原で免疫して,6-8日目に採血してELISA法で おこなうのが最適であると考えられた.

文献

1) Sedgwick, J. D.,C. Czerkinsky. J. Immunol. Methods,

150, 159-175, 1992.

2) Botnick, L. E., E. C. Hannon,S. Hellman. Nature, 262,

68-70, 1976.

3) Braciale, V. L.,C. R. Parish. Cell Immunol., 51, 1-12,

1980.

4) Siena, S., H. Castro-Malaspina, S. C. Gulati, et al.:

Blood, 65, 655-662, 1985.

(4)

(B) 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 0 2 4 6 8 Days O D 4 05 nm * * (A) 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 0 2 4 6 8 Days O D 4 0 5 n m *

Fig. 1 Quantity of OVA specific antibody production by ELISA method

(A) ICR mice,n=2-5 (B) BALB/c mice,n=2-6,mean+SE, *p<0.05,◆:PBS,○:OVA 20 µg/mouse,●:OVA 100 µg/mouse

(B) 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 0 2 4 6 8 Days O D 405 nm * * (A) 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 0 2 4 6 8 Days O D 405 nm

Fig. 2 Quantity of KLH specific antibody production by ELISA method

(A) ICR mice,n=2-5 (B) BALB/c mice,n=2-6,mean+SE, * p<0.05,◆:PBS,○: KLH 20 µg/mouse,●: KLH 100 µg/mouse

0 50 100 150 200 250 300 350 PBS 20 100 PBS 20 100 ICR BALB (A) No. of Spots OVA μg * * * 0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 14000 16000 PBS 20 100 PBS 20 100 ICR BALB (B) Area of Spots OVA μg * * * *

Fig. 3 Quantity of OVA specific antibody production by ELISPOT method

(5)

Ann. Rep. Tokyo Metr. Inst. Pub. Health, 59, 2008 320 0 50 100 150 200 250 300 350 PBS 20 100 PBS 20 100 ICR BALB (A) No. of Spots KLH μg * * 0 20000 40000 60000 80000 100000 120000 PBS 20 100 PBS 20 100 ICR (B) BALB Area of Spots KLH μg * * * *

Fig. 4 Quantity of KLH specific antibody production by ELISPOT method

(A) Number of spots,n=6 (B) Area of spots,n=6,mean+SE, * p<0.05, □: 5 x 105 cells,■: 1.5 x 106 cells

0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

O

D

4

0

5 n

m

pre 11days 15 days *

*

Fig. 5 The inhibitory effect of the antibody production by the cyclophosphamide administration (ELISA method) *p<0.01 □:no treat, ■:PBS/OVA, □:CYC/OVA

0 50 100 150 200 250 300 350 no PBS/OVA CYC/OVA No. of Spots * (A) 0 4000 8000 12000 16000 no PBS/OVA CYC/OVA Area of Spots (B)

Fig. 6 The inhibitory effect of the antibody production by the cyclophosphamide administration (ELISPOT method) (A) No. of spots (B) Area of spots *p<0.01, □: 5 x 105 cells, ■: 1. 5x 106 cells

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Tokyo Metropolitan Institute of Public Health

3-24-1, Hyakunin-cho, Shinjuku-ku, Tokyo 169-0073 Japan

Investigation of T-cell Mediated Antibody Production- Comparison of ELISA and ELISPOT

Atsumi Yamaguchi, Tomoko Fujitani, Norio Ohashi, Dai Nakae and Akio Ogata

We have previously tested the toxicities of various chemicals using ICR mice. Some of the chemicals affected organs involved in the immune system,such as thymic atrophy and the hypertrophy of the spleen. It is necessary to examine whether a chemical has an influence on antibody production to determine that a chemical has immunotoxic properties. There are two methods for antibody detection, ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay), a method that measures the concentration of antibody in the serum, and the PFC (plaque-forming cell) method, which measures the number of IgM plaque-forming cells. Recently,the ELISPOT (enzyme-linked immunospot assay) method 1) has attracted a great deal of attention because it directly measures antibody forming cells and is considered to be more sensitive than the ELISA method.

In this paper,we compared with the ELISA and ELISPOT methods using two antigens,keyhole limpet hemocyanin (KLH) and ovalbumin (OVA),which both have high antigenicity in T-cell mediated antibody production. We also conducted a comparison between ICR mice and BALB/c mice because BALB/c mice are typically used for immunoreactive evaluations.

Fig. 1 Quantity of OVA specific antibody production by ELISA method
Fig. 4 Quantity of KLH specific antibody production by ELISPOT method

参照

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