• 検索結果がありません。

Overview_TME-Therapy.pptx

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2022

シェア "Overview_TME-Therapy.pptx"

Copied!
9
0
0

読み込み中.... (全文を見る)

全文

(1)

免疫細胞 がん細胞

リンパ管       壁細胞

   近年年の研究から、腫瘍組織に特徴的な微⼩小環境要因

(

1)

が新たな治療療標的 として注⽬目されている1,2。例例えば、固形腫瘍に形成される低酸素環境はがんの 悪性化に関わり、最も有望な

環境標的治療療

のターゲットである3,4

1

がん微⼩小環境の構成要素の概略略図。

がん微⼩小環境を標的とした新しいがん治療療

    ⾎血管        

線維芽細胞  

低酸素

低pH 低栄養

(⽂文献2を改変)

(2)

   ほぼ全ての固形腫瘍には、細胞増殖と⾎血管新⽣生の不不均衡に起因する低酸素 環境が存在する

(

2)

5。⼀一部のがん細胞は低酸素環境に適応し、抗がん剤や 放射線に抵抗性を⽰示すうえに、浸潤・転移・再発の原因となる。

腫瘍内低酸素環境とがんの悪性化

1 mm

低酸素領領域

壊死領領域

2

固形腫瘍内の低酸素環境。腫瘍の中央部は酸素・栄養不不⾜足で壊死しており、壊死 領領域周辺の茶茶⾊色く染⾊色された領領域が酸素分圧

10 mmHg(

酸素濃度度約

1.3%)

以下の低酸素 環境である。

(3)

   腫瘍組織を顕微鏡観察すると、酸素の拡散が乏しい⾎血管から離離れた場所に 低酸素領領域が形成されていることがわかる

(

3A)

。がん細胞の低酸素環境へ の適応には低酸素誘導因⼦子

(HIF)

の活性化が重要な役割を果たす。

HIF

は細胞 の低酸素環境への適応応答を司る転写因⼦子であり、多くのがん種で悪性化と の関連が報告されている

(

3B)

低酸素誘導因⼦子とがんの悪性化

有酸素 ⾎血管 低酸素

壊死

HIF

悪性化がん細胞

⾎血管:CD31, 低酸素:ピモニダゾール

3 (A)

 免疫蛍光染⾊色した腫瘍組織の顕微鏡イメージ。

(B)

腫瘍内の低酸素環境 の⽣生成と

HIF

活性化の模式図。

A B

(4)

低酸素誘導因⼦子と予後不不良良

   臨臨床検体を⽤用いた検証によって、

HIF

の⾼高発現は患者の予後を悪化させる ことが、乳がん、頭頸部がん、膀胱がん、前⽴立立腺がん、膵臓がんなど多数の がん種で報告されている6-9

  

HIF

の⾼高発現によって予後不不良良が引き起こされるメカニズムは、細胞や腫 瘍マウスモデルを⽤用いて様々な観点から説明されてきた10,11。例例えば、⾎血管 内⽪皮細胞増殖因⼦子の産⽣生上昇に伴う⾎血管新⽣生や、細胞外基質分解酵素が活性 化することでがん細胞が積極的に浸潤し、転移が促進される。また、

HIF

の 活性化はがん細胞の代謝様式の変化、抗アポトーシスを誘導し、放射線や化 学療療法への耐性を増⻑⾧長する

(

4)

12

HIF

薬剤耐性 代謝シフト

⾎血管新⽣生 浸潤・転移

VEGFs, ANGPT2, PDGFB, CXCL12, TWIST1, LOX, MET, MMPs, CTDS

ABCB1,IGF2, EPO, SNAl1, ADM

PDK1, PKM2, BNIP3, LDHA, SLC2A1

4 HIF

によって発現が制御される遺伝⼦子群の例例

(5)

低酸素誘導因⼦子の機能制御機構

  

HIF

はヘテロダイマーとして機能する転写因⼦子であり、

α

サブユニットであ る

HIF-α

は酸素濃度度依存的に分解制御されている

(

5A)

。有酸素下では、酸 素依存的分解ドメイン

(ODD)

が⽔水酸化され、ユビキチン

-

プロテアソーム機構 で分解されることで転写因⼦子として機能しない

(

5B)

。⼀一⽅方、低酸素下では

ODD

は⽔水酸化されず

HIF-α

は安定化し、核内移⾏行行した後、

HIF-β

とダイマーを 形成して転写因⼦子として機能する12

HIF

によって発現制御される遺伝⼦子は

200

以上報告されており、その中にがん細胞の悪性化を促す遺伝⼦子が多く含 まれている12,14

酸素濃度度  (%)

21 10

5 3 1

HIF-1α

5 (A)

 各酸素濃度度下で培養したヒト乳がん細胞

MDA-MB-231

における

HIF-1α

の 発現をウェスタンブロットで検出した。

(B) PHD

による

ODD

の⽔水酸化、

pVHL

に よるユビキチン化を介した

HIF-α

の分解制御機構の模式図。

A B

pVHL

OH

PHD O2

ODD

ODDの⽔水酸化

HIF-α

OH OH

ODD HIF-α

OH

Ub Ub Ub

プロテアソーム分解

(6)

融合タンパク質製剤による低酸素がん細胞の標的

   我々は、

HIF

が活性化した低酸素がん細胞に特異異的に細胞死を誘導する新 規治療療薬

TOP3 、 POP33

の開発を進めてきた15-‐‑‒18。これらの薬剤は、薬剤の 細胞内への輸送を担う細胞膜透過ドメイン

(TAT or PTD3)

HIF-α

の制御機構 を模倣する酸素依存的分解ドメイン

(ODD)

と細胞死を誘導する

Procaspase-3

3

つの機能ドメインを融合した⼈人⼯工的に設計されたタンパク質製剤である

(

6A)

TAT

によって細胞内に輸送された

TOP3

は有酸素化では

HIF-α

と同様 の機構で分解されるが、低酸素環境下では安定化し、

ProCaspase3

が活性さ れることで細胞死を誘導する

(

6B)

6 (A)

 融合タンパク質製剤

TOP3, POP33

の模式図。

(B) TOP3, POP33

の低酸 素がん細胞標的メカニズムの模式図。

A B

TAT ODD Procaspase-3

TOP3

毒性なし

正常細胞

ユビキチン化 分解

プロセシング 活性化

細胞死

低酸素がん細胞

PTD3 ODD Procaspase-3

POP33

(7)

融合タンパク質製剤TOP3の臨臨床応⽤用に向けて

   これまでに

TOP3

POP33

の投与によって、様々な腫瘍モデルマウスにお いて抗腫瘍効果が得られることを確認している15-19。その中でも、有効な治 療療⼿手法が存在しない膵臓がんに対して、がん細胞の増殖・転移を抑制し、顕 著な延命効果が得られることを確認している

(

7)

18。現在、⽇日本医療療研究開 発機構

(AMED)

の⽀支援の元、

TOP3

の前臨臨床研究のため、

GMP

レベルでの製 剤調整を進めると共に、特に膵臓がんを対象として、既存の抗がん剤との併

⽤用療療法の治療療効果について調査している。

7 POP33

による膵臓がんの治療療効果。

(A)

光イメージングによって治療療群と未 治療療群のがん細胞の増殖、転移を可視化した。

(B) POP33

による延命効果。

A B

未治療療

POP33

⽣生存率率率

 [%]

治療療開始後⽇日数

POP33 未治療療 POP33

未治療療 1 3 5 治療療開始後⽇日数7 9 11 13 15 17

100

60 40 20 0 80

(8)

参考⽂文献

1.  Joyce JA, Therapeutic targeting of the tumor microenvironment, Cancer Cell 7, 513 (2005).

2.  Junttila MR & de Sauvage FJ, Influence of tumor micro-environment heterogeneity on therapeutic response, Nature 501, 346 (2013).

3.  Kizaka-Kondoh S, et al., Tumor hypoxia: a target for selective cancer therapy, Cancer Sci 94, 1021 (2003).

4.  Kizaka-Kondoh S, et al., The HIF-1-active microenvironment: An environmental target for cancer therapy, Adv Drug Deliv Res 61, 623 (2009).

5.  Vaupel P & Mayer A, Hypoxia in cancer: significant and impact on clinical outcome, Cancer Metastasis Rev 26, 225 (2007).

6.  Dhani N, et al., The clinical significance of hypoxia in human cancers, Semin Nucl Med 45, 110 (2015).

7.  Schindl M, et al., Overexpression of hypoxia-inducible factor 1α associated with an

unfavorable prognosis in lymph node-positive breast cancer, Clin Cancer Res 8, 1831 (2002).

8.  Gong L, et al., Prognostic value of HIFs expression in head and neck cancer: A systemic review, PLoS ONE 8, e75094 (2013).

9.  Theodropoulos VE, et al., Hypoxia-inducible factor 1α expression correlateds with angiogenesis and unfavorable prognosis in bladder cancer, Eur Urol 46, 200 (2004).

10.  Lu X & Kang Yibin, Hypoxia and hypoxia-inducible factors: Master regulators of metastasis, Clin Cancer Res 16, 5928 (2010).

11.  Semenza GL, HIF-1: upstream and downstream of cancer metabolism, Curr Opin Genet Dev 20, 51 (2010).

(9)

1.  Joyce JA, Therapeutic targeting of the tumor microenvironment, Cancer Cell 7, 513 (2005).

2.  Junttila MR & de Sauvage FJ, Influence of tumor micro-environment heterogeneity on therapeutic response, Nature 501, 346 (2013).

3.  Kizaka-Kondoh S, et al., Tumor hypoxia: a target for selective cancer therapy, Cancer Sci 94, 1021 (2003).

4.  Kizaka-Kondoh S, et al., The HIF-1-active microenvironment: An environmental target for cancer therapy, Adv Drug Deliv Res 61, 623 (2009).

5.  Vaupel P & Mayer A, Hypoxia in cancer: significant and impact on clinical outcome, Cancer Metastasis Rev 26, 225 (2007).

6.  Dhani N, et al., The clinical significance of hypoxia in human cancers, Semin Nucl Med 45, 110 (2015).

7.  Schindl M, et al., Overexpression of hypoxia-inducible factor 1α associated with an

unfavorable prognosis in lymph node-positive breast cancer, Clin Cancer Res 8, 1831 (2002).

8.  Gong L, et al., Prognostic value of HIFs expression in head and neck cancer: A systemic review, PLoS ONE 8, e75094 (2013).

9.  Theodropoulos VE, et al., Hypoxia-inducible factor 1α expression correlateds with angiogenesis and unfavorable prognosis in bladder cancer, Eur Urol 46, 200 (2004).

10.  Lu X & Kang Yibin, Hypoxia and hypoxia-inducible factors: Master regulators of metastasis, Clin Cancer Res 16, 5928 (2010).

11.  Semenza GL, HIF-1: upstream and downstream of cancer metabolism, Curr Opin Genet Dev 20, 51 (2010).

12.  Semenza GL, Molecular mechanisms mediating metastasis of hypoxic breast cancer cells,Trends Mol Med 18, 534 (2012).

13.  Epstein ACR, et al., C. elegance EGL-9 and mammalian homologs define a family of dioxygenases that regulate HIF by prolyl hydroxylation, Cell 107, 43 (2001).

14.  Hypoxia-inducible facots: mediators of cancer progression and targets for cancer therapy, Trend Pharmacol Sci 33, 207 (2012).

15.  Antitumor effect of TAT-oxygen-dependent degradation-caspase-3 fusion protein specifically stabilized and activated in hypoxic tumor cells, Cancer Res 62, 2013 (2002).

16.  Harada H, et al., Mechanism of hypoxia-specific cytotoxicity of procaspase-3 fused with a VHL-mediated protein destruction motif of HIF-1α containing Pro564, FEBS Lett, 580, 5718 (2006).

17.  Optical imaging of tumor hypoxia and evaluation of efficacy of a hypoxia-targeting drug in living animals, Mol Imag 4, 182 (2005).

18.  Kizaka-Kondoh S, et al., Selective killing of hypoxia-inducible factor-1-active improves

survival in a mouse model of invasive and metastatic pancreatic cancer, Clin Cancer Res 15, 3433 (2009).

19.  Hiraga T, et al., Hypoxia and hypoxia-inducible factor-1 expression enhance osteolytic bone metastases of breast cancer, Cancer Res 67, 4157 (2007).

図 5 (A)   各酸素濃度度下で培養したヒト乳がん細胞 MDA-MB-231 における HIF-1α の 発現をウェスタンブロットで検出した。 (B) PHD による ODD の⽔水酸化、 pVHL に よるユビキチン化を介した HIF-α の分解制御機構の模式図。 A B  pVHL  OH PHD O2 ODD ODDの⽔水酸化HIF-α OH OH ODD  HIF-α  OH  Ub  Ub  Ub  プロテアソーム分解
図 6 (A)   融合タンパク質製剤 TOP3, POP33 の模式図。 (B) TOP3, POP33 の低酸 素がん細胞標的メカニズムの模式図。

参照

関連したドキュメント

According to multi- variate analysis, expression of CD42b, a platelet marker, in our biopsy specimens from advanced gastric cancer with preoperative DCS therapy was

Efficacy of tumor-targeting Salmonella typhimurium A1-R in combination with anti-angiogenesis therapy on a pancreatic cancer patient-derived orthotopic xenograph (PDOX) and

Expression of erythropoietin (EPO), thrombopoietin (TPO), and stem cells factor (SCF) was examined by RT-PCR analysis in (1) PDGFRa negative fraction, (2) PDGFRa positive fraction,

Consistent with previous re- ports that Cdk5 is required for radial migration of cortical neurons in mice (Gilmore et al., 1998; Ohshima et al., 2007), radial migration of

In the normal pancreas, moderate to marked basic FGF immuno- reactivity was present in a heterogeneous pattern at the basal aspect of acinar cells, and intense cytoplasmic FGF

The data presented here suggest that SEMA3A has a tumor suppressor function in OPC because our Kaplan–Meier survival analysis showed that low SEMA3A expression significantly

Gemcitabine induced CXCL8 mRNA expression (data not shown) and CXCL8 protein expression in pancreatic cancer cells in xenografted tumor tissues (Figure 4A).. We

NELL1 (a) and NELL2 (b) mRNA expression levels in renal cell carcinoma cell lines OS-RC-2, VMRC-RCW, and TUHR14TKB and control HEK293T cells were analyzed using quantitative