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Garenoxacin の invitro 代謝およびヒトチトクロム P450 に対する作用 【原著・基礎】

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(1)

【原著・基礎】

Garenoxacin の in vitro 代謝およびヒトチトクロム P450 に対する作用

中村 哲朗・飛世 千栄・加藤 寛・片井 真樹・早川 大善・藤堂 洋三 富山化学工業株式会社綜合研究所

(平成

19

4

27

日受付・平成

19

8

9

日受理)

Garenoxacin mesilate hydrate

(GRNX)の臨床における薬物動態学的薬物間相互作用の発現の可能性 を評価するため,GRNXのヒト肝ミクロソームによる代謝,ヒト初代培養肝細胞を用いたチトクロム

P450(CYP) 1A2

および

CYP3A4

活性に対する誘導作用,およびヒト肝ミクロソームを用いた各

CYP

の標準基質代謝活性に対する阻害作用を検討した。GRNXは,ヒト肝ミクロソームにおいて

NADPH

の有無にかかわらずほとんど代謝されず,GRNXの代謝に対して

CYP

の関与は少なかった。また,

GRNX

は血漿中非結合型濃度(約

6 µ mol! L,400 mg

反復経口投与時のヒト

C

maxより算出)の約

17

(100

µ mol ! L)まで CYP1A2

および

CYP3A4

に対して酵素誘導作用を示さなかった。さらに,

CYP1A2,

CYP2A6,CYP2C9,CYP2C19,CYP2D6,CYP2E1

および

CYP3A4

に対する阻害作用は弱く,いずれ の分子種に対しても

50% 阻害濃度は 1,000 µ mol! L

以上であった。以上,GRNXを臨床で他薬剤と併用 した場合に,CYPを介した薬物間相互作用が発現する可能性は低いと考えられた。

Key words: garenoxacin,cytochrome P450,drug-drug interaction

Garenoxacin mesilate hydrate

(GRNX)は,富山化学工業 株式会社で創製された新規な

des-F

(6)

-quinolone

系抗菌薬で ある。本薬剤は,従来のフルオロキノロン系抗菌薬に必須とさ れていた

6

位フッ素置換基がなく,既存薬とは異なった新規 な化学構造を有している。また,GRNXはグラム陽性菌およ びグラム陰性菌に対して強い抗菌活性および幅広い抗菌スペ クトルを示すことが明らかにされている1,2)。GRNXの代謝物 としては,動物において硫酸抱合体

M1,酸化的代謝物 M4

および

M5,ならびにグルクロン酸抱合体 M6

が報告されてい

3)。今回,臨床における

GRNX

の薬物間相互作用リスクを評 価するために,ヒト肝ミクロソームによる

in vitro

代謝試験を 行った。また,ヒト初代培養肝細胞を用いたチトクロム

P450

(CYP)誘導試験およびヒト肝ミクロソームを用いた

CYP

阻害試験により,ヒト

CYP

に対する

GRNX

の影響を検討し た。

I. 材料および方法 1.被験物質および試薬

GRNX

(分子量

540.53,遊離塩基として 426.41)は富山

化学工業(株)において合成した。14

C-GRNX

は第一化学 薬 品(株)に お い て 合 成 し た(比 放 射 能:335 MBq

! mmol)。 HPLC

による放射化学的純度は

98% 以上であっ

た。Fig. 1に化学構造式および標識位置を示す。

GRNX

代謝物の標準物質

M1,M4

および

M5

は富山 化学工業(株)において合成した。Fig. 1に化学構造式を 示す。なお,代謝物

M6

(グルクロン酸抱合体)標準物質

は合成が困難であったため,使用しなかった。

7―エトキシレゾルフィン,レゾルフィン,フェナセチ

ン,アセトアミノフェン,7―エトキシクマリン,テスト ステロン,

α

―ナフトフラボン,ジエチルジチオカルバミ ン酸ナトリウム塩,スルファフェナゾール,トラニルシ プロミン塩酸塩,キニジン塩酸塩

1

水和物,クロトリマ ゾール,オメプラゾール,リファンピシン,ペニシリン

!

ストレプトマイシンおよびダルベッコリン酸緩衝液(D-

PBS)はSigma-Aldrichより購入した。また,ring-U-

14

C―

トルブタミド(比放射能

2.26 GBq! mmol), S-4-

14

C―メフェ

ニトイン(2.07 GBq

! mmol), guanidine-

14

C―デブリソキン

トリフルオロ酢酸塩(2.00 GBq!

mmol)および 2-

14

C―クロ

ルゾキサゾン(2.07 GBq!

mmol)は GE Healthcare

より,

4-

14

C―テストステロン(2.07

または

1.85 GBq! mmol)は GE Healthcare

または

PerkinElmer

より購入した。ウン ベリフェロンはナカライテスク(株)より購入した。ヒ ドロキシトルブタミド,

4ʼ―ヒドロキシメフェニトイン,

4―ヒドロキシデブリソキン硫酸塩,6―ヒドロキシクロル

ゾキサゾンおよび

6 β

―ヒドロキ シ テ ス ト ス テ ロ ン は

SAFC

製を使用した。

β -NADPH, β -NADP

およびグル コース

6

リン酸二ナトリウム(G6P)はオリエンタル酵母 工業(株)製を使用し,グルコース

6

リン酸脱水素酵素

(G6PDH)は和光純薬工業(株)より購入した。培地はブ レットキット

HCM:培地添加因子セットを三光純薬株

式会社より購入した。非働化ウシ胎児血清(FCS)は

富山県富山市下奥井

2―4―1

(2)

Fi g . 1 . Che mi c a l s t r uc t ur e s of 1 4 C- g a r e nox a c i n, a nd me t a bol i t e s M1 , M4 , a nd M5 .

(1)

14

C-Garenoxacin (2) Metabolite M1

(3) Metabolite M4 (4) Metabolite M5

N

O O HN

H

3

C H

COOH F

F

・H

3

C-SO

3

H・H

2

O

labeled position

N

O O N

H

3

C H

COOH F

F HO

3

S

N

O O HN

H

3

C H

COOH F

F O

N

O O HN

COOH F

F O HO

H

3

C

Invitrogen

製を使用した。肝細胞の培養には,

BD

バイオ コートTM(マトリゲルTMマトリクス薄層コート,24ウェ ルプレート,BD Bioscience)を使用した。その他の試薬 は市販の特級品または

HPLC

用を使用した。

2.ヒト試料

提供者の同意を得た外国人

10

ドナー(男女各

5

名)お よび

15

ドナー(男性

8

名,女性

7

名)由来のプールドヒ ト肝ミクロソーム(Lot No. HHM-0254,HHM-0257およ

045243060025),ならびに白人女性由来のヒト凍結肝

細胞(Lot No. 045301940002)は(株)ケーエーシーより 購入した。

3.ヒト肝ミクロソームによる代謝

NADPH

生成系(終濃度:1.3 mmol!

L β -NADP

,3.3

mmol! L G6P,0.4 unit! mL G6PDH

お よ び

3.3 mmol! L

塩化マグネシウム)を含む

100 mmol! L

リン酸カリウム 緩衝液(pH 7.4)にヒト肝ミクロソーム(終濃度:1 mg

protein! mL)を加え,37℃ で 5

分間プレインキュベー シ ョ ン し た。14

C-GRNX

溶 液(終 濃 度:20お よ び

200 µ mol! L)添加にて反応開始し,37℃ で 2

時間インキュ ベーションした。最終反応容量は

400 µ L

とした。氷冷 下,アセトニトリル

!

メタノール(1: 1)

800 µ L

添加にて反 応停止後,約

11,000×g

5

分間遠心して上清を回収し た。沈渣をアセトニトリル!メタノール(1: 1)で洗浄し,

洗浄液を先の上清と混合して減圧濃縮後,残渣を移動相

A

200 µ L

に 再 溶 解 し て

Radio-HPLC

分 析 試 料 と し た。また,

NADPH

非添加の系を設定し,

NADPH

生成系 に代えて蒸留水を添加した。

なお,ヒト肝ミクロソームの酵素活性を確認するため,

テストステロン

6 β

位水酸化活性(CYP3A4活性)を測定 した。すなわち,14

C―テストステ ロ ン(50 µ mol! L),

NADPH

生成系およびヒト肝ミクロソーム(0.2 mg pro-

tein! mL)を 37℃ で 10

分間インキュベーション後,アセ トニトリル!メタノール(1: 1)添加にて反応を停止し,遠 心上清を

TLC

分析に用いた。

以上の実験例数は

2

とした。

4.ヒト CYP1A2

および

CYP3A4

に対する誘導作用 ヒト凍結肝細胞を融解後,ハイドロコルチゾン,アス コルビン酸,トランスフェリン,インスリン,BSA,

hEGF,ゲンタマイシン !

アンフォテリシン

B

および

FCS

を含む

HCM

培地に懸濁して

1×10

6

viable cells! mL

した。トリパンブルー染色法による細胞生存率は約

75%

であった。細胞懸濁液は,プレートに播種した後に

CO

2

インキュベータ(37℃,95%

air-5% CO

2)内で

24

時間前 培養した。なお播種

4

時間後に培地を交換した。さらに,

ハイドロコルチゾン,アスコルビン酸,トランスフェリ ン,インスリン,

BSA

およびペニシリン!ストレプトマイ シンを含むインキュベーション用培地に交換して

24

間前培養した。

被験物質暴露は,前培養の後

GRNX

(4,20および

100 µ mol! L),溶媒対照(0.4% ジメチルスルホキシド)また

は陽性対照物質を含むインキュベーション用培地中で

72

時間行った。陽性対照物質には,オメ プ ラ ゾ ー ル

(CYP1A2)またはリファンピシン(CYP3A4)を使用し た。培地は

24

時間ごとに交換した。次いで

CYP1A2

およ

(3)

CYP3A4

活性測定のため,細胞を

D-PBS

で洗浄し,そ れぞれ基質としてフェナセチン(100

µ mol! L)またはテ

ストステロン(250

µ mol! L)を含む D-PBS

を添加して,

37℃ にて 6

または

4

時間インキュベーションした。イン キュベーション後,培養上清

100 µ L

にアセトニトリル

100 µ L

を添加して約

11,000×g

10

分間遠心し,上清 を分析試料とした。以上の実験例数は

2

とした。

5.ヒト CYP

標準基質代謝活性に対する阻害作用

GRNX

(終濃度:40,200および

1,000 µ mol ! L),陽性

対照物質または溶媒対照[蒸留水またはアセトニトリル

(終濃度:1%)]を,標準基質(終濃度:2

µ mol! L)およ

びヒト肝ミクロソーム(終濃度:1 mg protein!

mL)を含

100 mmol ! L

リン酸カリウム緩衝液(pH 7.4)に加えて

37℃ で 1

分間プレインキュベーションした。標準基質お

よび陽性対照物質として,以下のものを使用した:7―エ ト キ シ レ ゾ ル フ ィ ン お よ び

α

―ナ フ ト フ ラ ボ ン

(CYP1A2),7―エトキシクマリンおよびジエチルジチオ カルバミン酸(CYP2A6),14

C―トルブタミドおよびスル

ファフェナゾール(CYP2C9),

S-

14

C―メフェニトインおよ

びトラニルシプロミン(CYP2C19),14

C―デブリソキンお

よびキニジン(CYP2D6),14

C―クロルゾキサゾンおよび

ジエチルジチオカルバミン酸(CYP2E1),ならびに14

C―

テストステロンおよびクロトリマゾール(CYP3A4)。

NADPH

(終濃度:1 mmol!

L)添加にて反応開始し,37℃

で所定時間インキュベーションした。反応時間は直線性 の得られた範囲,すなわち

10

分(CYP1A2,CYP2A6 お よ び

CYP3A4),15

分(CYP2C9,CYP2D6お よ び

CYP2E1)または 30

分(CYP2C19)とした。最終反応容 量は,CYP1A2

600 µ L,その他の分子種では 200 µ L

と し た。イ ン キ ュ ベ ー シ ョ ン 後,メ タ ノ ー ル

1.2 mL

(CYP1A2),7.5% トリクロロ酢酸

100 µ L

(CYP2A6),

または

TLC

マーカーを含むエタノール溶液

400 µ L(そ

の他の分子種)を添加,氷冷して反応を停止し,得られ た混液を以降の分析に使用した。なお,

TLC

マーカーと して,ヒドロキシトルブタミド(CYP2C9),4ʼ―ヒドロキ シメフェニトイン(CYP2C19),

4―ヒドロキシデブリソキ

ン(CYP2D6),6―ヒ ド ロ キ シ ク ロ ル ゾ キ サ ゾ ン

(CYP2E1)お よ び

6 β

―ヒ ド ロ キ シ テ ス ト ス テ ロ ン

(CYP3A4)を使用した。以上の実験例数は

3

とした。

6.分析条件

1) ヒト肝ミクロソームによる代謝

14

C-GRNX

の代謝プロファイルの分析には,ポンプ(L-

6200,(株)日立製作所),検出器(L-4000,(株)日立製

作 所),Radio検 出 器(RadiomaticTM

525TR,PerkinEl- mer)およびオートサンプラー(AS8020,東ソー(株))

を使用し,データ処理はワークステーションシステム

(FLO-ONETM

for Windows,PerkinElmer)で行った。分

析カラムは

Develosil ODS-HG-5

(内径

4.6 mm×長さ 150

mm,野村化学(株)),カラム温度は 30℃ とした。移動

相は

A

液[アセトニトリル

!

クエン酸緩衝液(pH 4.0)

!

蒸留水(10: 15: 75)]および

B

液[アセトニトリル!クエ ン酸緩衝液(pH 4.0)

!

蒸留水(35: 15: 50)]のグラジエン ト(B

0% で開始後,15

分までに

B

60% 次いで 35

分までに

B

100% となる線形グラジエントとし,その

45

分まで

B

100%)とした。流速は移動相 1.0 mL!

min,液 体 シ ン チ レ ー タ ー(Ultimaflo

TM

M,PerkinEl- mer) 3.0 mL! min

とし,検出は波長

280 nm

および放射能

(フローセル容量:500

µ L)にて行った。

6 β

―ヒドロキシテストステロン濃度は,遠心上清の一 部を

TLC

展開後4),プレート上の放射能分布をバイオイ メージングアナライザ(BAS5000,富士写真フィルム

(株))を用いて測定した。

6 β

―ヒドロキシテストステロン の位置は,同時に展開した非標識

TLC

マーカーにて確 認した。

2) アセトアミノフェンおよび 6 β

―ヒドロキシテスト ステロンの分析

酵素誘導試験における肝細胞培養上清中のアセトアミ ノフェンおよび

6 β

―ヒドロキシテストステロン濃度は

HPLC

による絶対検量線法により測定した。

アセトアミノフェン定量にはポンプおよびオートサン プラー(W2795,Waters)ならびに検出器(W2487,Wa-

ters)を使用し,データ処理はデータ処理ソフト(Empow- er

TM

2,Waters)で 行 っ た。分 析 カ ラ ム は YMC pack ODS AM312

(粒子径

5 µ m, 内径 6 mm×長さ 150 mm,

(株)ワイエムシィ),カラム温度は

30℃ とした。移動相

A

液[アセトニトリル!蒸留水!過塩素酸!過塩素酸ナ トリウム(100: 900: 1: 5,v!

v! v! w)]および B

液[アセ トニトリル!蒸留水!過塩素酸!過塩素酸ナトリウム(800:

200: 1: 5,v ! v ! v ! w)]のグラジエント(B

0% で開始後 15

分までに

B

50% となる線形グラジエントとし,そ

の後

20

分まで

B

50%)とした。流速は 1.0 mL! min,

検出波長は

254 nm

とした。

6 β

―ヒドロキシテストステロン定量にはポンプ(L-

7100,(株)日立製作所),検出器(L-7400,(株)日立製

作所),データ処理装置(D-7500,(株)日立製作所)お よびオートサンプラー(717plus,Waters)を使用した。

分 析 カ ラ ム は

Nucleosil 5C

18(内 径

4.6 mm×長 さ 200 mm,

(株)ケムコ),カラム温度は

30℃,移動相はアセト

ニトリル!

100 mmol! L

リン酸緩衝液(pH 7.4)!蒸留水

(40: 1: 59)とし,流速

1.0 mL! min,検出波長 240 nm

で測 定した。

3) CYP

標準基質代謝活性の測定

CYP1A2

活性測定では,得られた混液を約

11,000×g

10

分間遠心後,上清中のレゾルフィン濃度を分光蛍光 光度計(日立

F2000,励起波長 550 nm,蛍光波長 585 nm)

で測定した。

CYP2A6

活性測 定 で は,混 液 の 遠 心 上 清

200 µ L

500 mmol! L

リン酸緩衝液(約

pH 9) 800 µ L

を添加し,ウ

(4)

Fi g . 2 . Re pr e s e nt a t i v e r a di oc hr oma t og r a m of 1 4 C- g a r e nox a c i n i nc uba t e d wi t h huma n l i v e r mi c r os ome s .

1 4 C- Ga r e nox a c i n ( 2 0 0 μ mol / L) wa s i nc uba t e d wi t h 1 mg pr ot e i n/ mL of huma n l i v e r mi c r os ome s i n t he pr e s e nc e of NADPH a t 3 7 ° C f or 2 hr .

Radioactivity (cpm)

Time (min) 0

0 7,500 15,000 22,500 30,000

5 10 15 20 25 30 35 40 45

Garenoxacin

ンベリフェロン濃度を分光蛍光光度計(日立

F2000,励起

波長

380 nm,蛍光波長 460 nm)で測定した

5)

その他の

CYP

活性測定は,生成した14

C

標識代謝物の 放射能測定により行った。すなわち,反応停止後,約

11,000×g

2

分間遠心し,上清を減圧乾固,エタノール

200 µ L

に再溶解して

TLC

で分離した。なお,沈渣はエタ ノールで

2

回洗浄し,洗浄上清を先の上清と合わせて乾 固した。TLCプレートは活性化処理(110℃,1時間)し

Silica gel 60F254

(0.5 mm,Merck),展開溶媒は酢酸 エチル!トルエン!蒸留水!ギ酸(12: 4: 4: 3)を混和後の上 層(CYP2D6),ク ロ ロ ホ ル ム

!

酢 酸 エ チ ル(3: 2)

(CYP2C19)およびクロロホルム!酢酸エチル!酢酸(70:

30: 1)

(CYP2E1)を 用 い た。CYP2C9お よ び

CYP3A4

の展開溶媒は文献4,6)に従った。UVランプにて目的代謝 物の展開位置を確認後,シリカゲル層をシンチレーショ ンバイアルに掻き取り,メタノール

1 mL

を加えて

30

分間振盪した(130 strokes!

min,Recipro shaker,タイ

テック)。シンチレーター(PCS,GE Healthcare)を

13 mL

加えて攪拌後,液体シンチレーションカウンター

(TRI-CARB 2500TR,PerkinElmer)により放射能を測 定した。

II. 結

1.ヒト肝ミクロソームによる代謝

14

C-GRNX

をヒト肝ミクロソームと

2

時間インキュ ベーションした後の典型的なラジオクロマトグラムを

Fig. 2

に示す。NADPHの有無にかかわらず,20および

200 µ mol ! L

いずれの

GRNX

濃度においても酸化的代謝

物である

M4(標準物質の保持時間:38

分)および

M5

(同:30分)を含め, 代謝物ピークは認められなかった。

また,14

C-GRNX

の残存率は,

NADPH

の有無にかかわら ず,20および

200 µ mol! L

でほぼ

100%(99.3〜102.3%)

であった。

な お,使 用 し た ヒ ト 肝 ミ ク ロ ソ ー ム(Lot No.

045243060025)のテストステロン 6 β

位水酸化活性は

1.13 nmol! min! mg protein

であり,十分な代謝活性を有 していたことから,

GRNX

はヒト肝ミクロソームによる 酸化的代謝をほとんど受けないと考えられる。

2.ヒト CYP1A2

および

CYP3A4

に対する誘導作用

GRNX

CYP1A2

お よ び

CYP3A4

誘 導 作 用 に つ い て,ヒト初代培養肝細胞を用いて評価した。基質として フェナセチンおよびテストステロンを用い,それぞれ生 成した代謝物(アセトアミノフェンおよび

6 β

―ヒドロキ シテストステロン)濃度からフェナセチン

O―脱エチル

化(CYP1A2)お よ び テ ス ト ス テ ロ ン

6 β

位 水 酸 化

(CYP3A4)活性を算出した(Fig. 3)。

CYP1A2

活性は,4,20および

100 µ mol! L

GRNX

72

時間処理した後も上昇せず,溶媒対照と同様に定量 下 限(0.5

µ mol! L,0.69 pmol! min! well

の 活 性 に 相 当)未満であった。一方,陽性対照のオメプラゾール(50

µ mol! L)は CYP1A2

活性を

2.8 pmol! min! well

(溶媒対 照の

4

倍以上相当)に上昇させた。

CYP3A4

活 性 も

CYP1A2

と 同 様,4,20お よ び

100 µ mol ! L

GRNX

72

時間処理した後も上昇せず,溶 媒対照(2.6 pmol!

min! well)と同程度の約 1.5〜3.0 pmol!

min! well

であった。一方,陽性対照のリファンピシン

(50

µ mol! L)は CYP3A4

活性を

12 pmol! min! well(溶

媒対照の約

5

倍)に上昇させた。

以上,GRNX

CYP1A2

および

CYP3A4

に対する誘 導作用を示さなかった。

3.ヒト CYP

標準基質代謝活性に対する阻害作用

GRNXのCYP1A2,CYP2A6,CYP2C9,CYP2C19,

CYP2D6,CYP2E1

および

CYP3A4

に対する阻害作用 について,ヒト肝ミクロソームを用いて各

CYP

に特異 的な代謝活性を指標に評価した(Table 1)。

GRNX

40

および

200 µ mol! L

では検討したすべて

CYP

活性にほとんど影響を及ぼさなかったが,1,000

µ mol! L

CYP2A6

および

CYP2D6

の活性を約

25% 減

少 さ せ た。ま た,CYP1A2,CYP2C9,CYP2C19,

(5)

Fi g . 3 . Ef f e c t of g a r e nox a c i n on CYP1 A2 a nd CYP3 A4 a c t i v i t y i n pr i ma r y c ul t ur e d huma n he pa t oc y t e s . Huma n he pa t oc y t e s we r e t r e a t e d wi t h g a r e nox a c i n ( 4 , 2 0 or 1 0 0 μmol / L) , pos i t i v e c ont r ol c ompounds ( 5 0 μmol / L ome pr a z ol e or 5 0 μ mol / L r i f a mpi c i n) , or v e hi c l e c ont r ol ( 0 . 4 % di me t hy l s ul f ox i de ) f or 7 2 hr . The c ul t ur e me di um c ont a i ni ng t he t e s t c ompound wa s r e pl a c e d da i l y wi t h f r e s h me di um ov e r t he e x pe r i me nt pe r i od. Da t a i s e x pr e s s e d a s t he me a n ( c ol umn) a nd i ndi v i dua l v a l ue s ( c i r c l e ) of dupl i c a t e e x pe r i me nt s .

ND: Not de t e c t e d ( l owe r l i mi t of qua nt i f i c a t i on f or a c e t a mi nophe n: 0 . 5 μ mol / L = 0 . 6 9 pmol / mi n/ we l l ) . (2) CYP3A4 activity

0 5 10 15 20

0.4% DMSO (vehicle control)

Garenoxacin 4 μ mol/L

Garenoxacin 20 μ mol/L

Garenoxacin 100 μ mol/L

Rifampicin (positive control) Testosterone 6 β -hydroxylation (pmol/min/well)

0 1 2 3 4 5

0.4% DMSO (vehicle control)

Garenoxacin 4 μ mol/L

Garenoxacin 20 μ mol/L

Garenoxacin 100 μ mol/L

Omeprazole (positive control) Phenacetin O -deethylation (pmol/min/well)

ND ND ND ND

(1) CYP1A2 activity

CYP2E1

および

CYP3A4

活性に対しては,

1,000 µ mol! L

においてもその阻害率は

20% 未満であった。一方,陽性

対照物質の各

CYP

活性に対する阻害率は約

30〜93%

であった。

III. 考

新規医薬品に関する種々の情報を提供することは,臨 床における医薬品の適正使用に繋がる。特に薬物動態学 的な観点からは,薬物間相互作用に関する情報提供が重 要である。薬物動態学的相互作用は主に代謝過程が原因 であり,中でも

CYP

が関与するものが大部分を占め 7)。本研究では,臨床における

GRNX

の被相互作用薬と してのリスク(併用薬から受ける影響)を評価するため,

ヒト肝ミクロソームを用いて

GRNX

の代謝に対する

CYP

の関与を検討した。また,

GRNX

の相互作用薬とし

てのリスク(併用薬に与える影響)を評価するため,ヒ ト初代培養肝細胞を用いて

CYP1A2

および

CYP3A4

性に対する

GRNX

の誘導作用,およびヒト肝ミクロソー ムを用いて薬物代謝に関与する主要な

CYP

に対する

GRNX

の阻害作用を検討した。

GRNX

は,ヒト肝ミクロソームにおいて

NADPH

の有 無にかかわらずほとんど代謝されなかった(Fig. 2)。この 結果は,14

C-GRNX 600 mg

投与後のヒト生体試料(血漿,

尿および糞)を用いた別検討で,主代謝物として

M1,次

いで少量の

M6

が検出され,酸化的代謝物はほとんど認 められなかった(未発表データ)ことと一致する。した がって,ヒトにおける

GRNX

の主代謝経路は,第

2

相反 応,特に硫酸抱合と考えられ,

CYP

の関与は少ないと結 論づけられる。また,GRNXのバイオアベイラビリティ

(6)

 C in, u C max R B

Q H

f p /R B

= + k a ・ ・ D F a ×

Ta bl e 1 . Ef f e c t of g a r e nox a c i n on t he CYP- c a t a l y z e d a c t i v i t y i n huma n l i v e r mi c r os ome s ( 1 ) CYP1 A2 , CYP2 A6 , CYP2 C9 , a nd CYP2 C1 9

Ac t i v i t y ( % of c ont r ol )

a)

( μ mol / L)

Te s t c ompound

CYP2 C1 9 CYP2 C9

CYP2 A6 CYP1 A2

9 7 . 4 ±4 . 6 9 6 . 4 ±1 . 4

9 9 . 5 ±6 . 6 1 0 4 . 0 ±1 . 1

4 0 Ga r e nox a c i n

8 7 . 2 ±6 . 1 1 0 1 . 9 ±4 . 2

9 6 . 0 ±3 . 5 1 0 1 . 9 ±0 . 4

2 0 0

8 3 . 8 ±1 7 . 0 9 6 . 5 ±3 . 1

7 5 . 1 ±4 . 1 8 9 . 7 ±0 . 2

1 , 0 0 0

3 5 . 9 ±2 . 4 2 4 . 5 ±0 . 2

6 2 . 2 ±3 . 8 8 . 2 ±0 . 2

Pos i t i v e c ont r ol

b)

( 2 ) CYP2 D6 , CYP2 E1 , a nd CYP3 A4

Ac t i v i t y ( % of c ont r ol )

a)

( μ mol / L)

Te s t c ompound

CYP3 A4 CYP2 E1

CYP2 D6

1 0 7 . 8 ±1 . 4 9 6 . 4 ±5 . 0

9 3 . 5 ±1 0 . 4 4 0

Ga r e nox a c i n

1 0 6 . 4 ±1 . 6 9 0 . 8 ±6 . 7

9 9 . 6 ±2 1 . 8 2 0 0

9 5 . 4 ±0 . 8 8 2 . 4 ±4 . 3

7 7 . 1 ±4 . 9 1 , 0 0 0

6 . 7 ±0 . 6 7 0 . 6 ±4 . 5

2 9 . 3 ±5 . 1 Pos i t i v e c ont r ol

b

a)

7 - Et hox y r e s or uf i n O - de e t hy l a t i on ( CYP1 A2 ) , 7 - e t hox y c ouma r i n O - de e t hy l a t i on ( CYP2 A6 ) , t ol but a mi de hy dr ox y l a t i on ( CYP2 C9 ) , S - me phe ny t oi n 4 ' - hy dr ox y l a t i on ( CYP2 C1 9 ) , de br i s o- qui ne 4 - hy dr ox y l a t i on ( CYP2 D6 ) , c hl or z ox a z one 6 - hy dr ox y l a t i on ( CYP2 E1 ) a nd t e s t os t e r one 6 β - hy dr ox y l a t i on ( CYP3 A4 ) .

b)

2 0 μ mol / L α - Na pht hof l a v one ( CYP1 A2 ) , 1 , 0 0 0 μ mol / L di e t hy l di t hi oc a r ba mi c a c i d ( CYP2 A6 ) , 2 μ mol / L s ul f a phe na z ol e ( CYP2 C9 ) , 2 0 μ mol / L t r a ny l c y pr omi ne ( CYP2 C1 9 ) , 2 μ mol / L qui ni di ne ( CYP2 D6 ) , 2 0 0 μ mol / L di e t hy l di t hi oc a r ba mi c a c i d ( CYP2 E1 ) a nd 2 μ mol / L c l ot r i ma z ol e ( CYP3 A4 ) .

Da t a i s e x pr e s s e d a s pe r c e nt a g e of t he me a n v a l ue of v e hi c l e c ont r ol ( di s t i l l e d wa t e r f or g a r e - nox a c i n, or 1 % a c e t oni t r i l e f or pos i t i v e c ont r ol c ompounds ) , a nd me a n ±S D of t r i pl i c a t e i nc uba t i ons . Ga r e nox a c i n wa s i nc uba t e d a t 3 7 ° C wi t h huma n l i v e r mi c r os ome s a nd t he pr obe s ubs t r a t e s , a s de s c r i be d i n Ma t e r i a l s a nd Me t hods .

(約

92%

8))および尿中排泄率(約

40%,600 mg

経口投与 時)9)から,代謝(腎外クリアランス)の寄与は全身クリ アランスの約

60% であり,GRNX

の代謝・排泄に占め

CYP

の寄与は小さく,GRNXの被相互作用薬として のリスクは低いと考えられる。

また,GRNXは臨床

C

max(400 mg反復経口投与

7

日目

11.06 µ g! mL=26 µ mol! L,臨床第一相試験成績)およ

び血漿中非結合型

GRNX

濃度(約

6 µ mol! L,上記 C

max

ex vivo

血漿中非結合型分率

0.25

10)を乗じて算出)のそ

れ ぞ れ 約

4

お よ び

17

倍 に 相 当 す る

100 µ mol ! L

ま で

CYP1A2

および

CYP3A4

活性を上昇させず,これらの 分子種に対する酵素誘導作用はなかった(Fig. 3)。

さ ら に,GRNX

CYP1A2,CYP2A6,CYP2C9,

CYP2C19,CYP2D6,CYP2E1

お よ び

CYP3A4

に 対 す る阻害作用が弱く,いずれの分子種に対しても

50% 阻害

濃度は

1,000 µ mol! L

以上であった(Table 1)。これは,

肝臓の酵素近傍の薬物濃度を求める以下のモデル式11) り算出したヒトにおける肝臓流入最大非結合型濃度(約

26 µ mol ! L)の約 38

倍以上に相当し,

GRNX

CYP

阻害 作用を介した薬物間相互作用発現の可能性は低いと考え られる。

C

in,u:肝臓流入最大非結合型濃度,

C

max

: 11.06 µ g! mL

(26

µ mol! L,臨床第一相試験成績), R

B:ヒト血液!

血漿中濃度比(0.77,in vitro試験より算出),ka:吸 収速度定数(0.1 min−112),D:投与量(400 mg=938

µ mol), F

a:バイオアベイラビリティ(92%)8)

Q

H ヒト肝血流速度(1.45 L!

min)

13)

f

p:ヒト血漿中非結 合型分率(0.25)10)

これらの結果より,GRNXは臨床投与量での血漿中濃 度において

CYP

阻害および誘導作用を示さず,CYP 代謝される薬剤と併用した場合も,併用薬の体内動態に 影響を与える相互作用薬としてのリスクは低いと考えら れた。

フルオロキノロン系抗菌薬との併用により薬物間相互 作用を引き起こす薬剤としてテオフィリンが挙げられ 14)。そ の 機 序 は フ ル オ ロ キ ノ ロ ン 系 抗 菌 薬 に よ る

CYP1A2

阻害とされており15,16),今回の検討で

GRNX

CYP1A2

に対する阻害作用は弱かったことから,GRNX

がテオフィリンとの相互作用を発現する可能性は低いと 推定された。しかし,臨床薬理試験(経口薬

garenoxacin

と経口薬

theophylline

の併用試験)にお い て,GRNX はテオフィリンの血漿中濃度をシプロフロキサシンと同 程度17)の約

1.2

倍まで上昇させた。二木ら17)の分類によれ ば,

GRNX

によるテオフィリン血漿中濃度の上昇は軽度 であり,副作用発現の可能性は低いが,その併用は注意 すべきであると考えられる。上記臨床薬理試験の結果に ついては,

GRNX

CYP

阻害作用からは説明できず,詳 細は不明である。なお,テオフィリンは,エリスロマイ

(7)

シンとの相互作用について薬物トランスポーターの関与 が示唆されており18),GRNXとテオフィリンの相互作用

CYP

以外のメカニズムが関与する可能性について,

今後さらなる検討が必要である。

以上,

GRNX

CYP

による代謝をほとんど受けず,か

CYP

に対して誘導および阻害作用を示さなかった。

したがって,臨床で

CYP

を介した薬物間相互作用が発 現する可能性は低いと考えられた。

謝 辞

本論文の作成に際して,実験にご協力いただきました 富山化学工業(株)現 臨床開発部の松本淳一氏に深く感 謝いたします。

文 献

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To assess the possibility of pharmacokinetic drug-drug interactions of garenoxacin mesilate hydrate

(GRNX), we investigated the metabolism of GRNX in human liver microsomes, the induction effect of GRNX

on cytochrome P450(CYP) 1A2 and CYP3A4 activity in primary cultured human hepatocytes, and the inhibi-

tion effect of GRNX on the metabolic activity of probe substrates for CYP isoforms in human liver micro-

somes. GRNX was hardly metabolized by human liver microsomes in the presence or absence of NADPH,

showing that CYPs are unlikely to be involved in the metabolism of GRNX. GRNX did not exhibit the induc-

tion effect on CYP1A2 and CYP3A4 activity at up to 100 µ mol! L, which was approximately 17-fold higher

than the unbound GRNX concentration in plasma (approximately 6 µ mol! L, calculated from the C

max

at 400

mg repeated oral dose in humans). GRNX had little inhibition effect on the CYP1A2, CYP2A6, CYP2C9,

CYP2C19, CYP2D6, CYP2E1, and CYP3A4 activity, and the 50% inhibition concentration for these CYP iso-

forms exceeded 1,000 µ mol! L. In conclusion, GRNX is unlikely to cause CYP-mediated drug-drug interac-

tions in humans when it is administered concomitantly with other drugs.

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