• 検索結果がありません。

PartialPurificat!on of.;一−N−AcetylgJucosaminidasein Carp Red Muscle and the;r GeneraL Property

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2021

シェア "PartialPurificat!on of.;一−N−AcetylgJucosaminidasein Carp Red Muscle and the;r GeneraL Property"

Copied!
8
0
0

読み込み中.... (全文を見る)

全文

(1)

BulI.Fac.Fish.M沌 Univ.  

No.1l;43−50   0ctoberl.1984   

Study of LysosomalEnzymesin Fish Muscle Tissues−V   

PartialPurificat!on of.;一−N−AcetylgJucosaminidasein Carp   Red Muscle and the;r GeneraL Property  

RyujiUENO,Yoshishige HoRIGUCHI,Tatsuo MoRISH王TA  

and TakashiTAKAHASHI  

Facu】ty of Fisheries,Mie University  

The present study was tlndertaken to partially purify β−N−aCetylglucosaminidase   from carp red muscle and to examine their generalproperty.β−N◆Acetylgluco5a汀Iinト   daseis separated by DEAE−eellulose ehromato針aphyitltO tWO eOmPOnent5,lysosomal   and solubleかN−aeetylglueosamiれidase.The formerconsists or threeisoenzymes.whieh   have the optimum pH at4.5wi症 eitrate buffer and at5.5with acetatebuffer.These   enzymes areinhibited by acetate,N一色Cetylglucosamine and N一息Cetylgalactosamjne,  

Thelatter has the optimum pH at6N7 with both buffersandisinhibitedbyN−aCetyト   ga】孔CtOSamine only.The en芸ymei5 eaSily denatured byincubation at 500c for30  

min.Itis sugge$ted thatlysosomalβ−N−aCetylglucosaminidaseis the type B enzyme   of human serum aれd kidney reported by RoB王NSON and Sl・IRL‡NG(19腿)and that soluble   β−N−aCetylglucosaminidase might be the type C emzyme of human and bovine brain   reported by BRAIDMAN e〜8〜.(1974)and OvERD王JK e〜α〜.(1975).  

Key words:β−N一息eetylgluco5aminidase,lysosomalenzym朗,earp muSC】e,purifト  

cation  

β−N−Acetylglucosaminidase(NAG),One Of the typica11ysosomalenzymes,is widely   distributedin animaltissues.The enzyme part妄cipatesin hydrolyzing the terminalβ−N−  

acetylglucosaminy=inkson oligosaccharides derived from glycolipids,muCOpOly$aCCharides,  

mucoprotein5and so on(SELZJINGER elal.1960,CoNCHIEand HAY1963,RoBINSON and   STIRL王NG1968).   

In the previous paper(UENO elal.1979),it has been reported that two types of   NAG were foundin the white and red museles of carp,Sepa㌻ating by differentialcer卜   trifugationinto twocomponents,lysosomaland soluble NAG5,The former which had the   Optimum pH at4.5with citrate buffer was presentin thelysosomalfraction,and the   latter which had the optimum pHat6.O with acetate bufferwasin the finalsupernatant.  

The present wol・ks are undertaken to purify partially both NAGs from earp redmusele   bymeansofDEAE−Ce=ulosechromat哨raphy and to examine their generalproperty,   

(2)

44   RyuiiUENO,Yoshishige HoRIGUCIll,Tatsuo MoRIS‖TA and TakashiTAKAHASHl  

Materials and Methods  

Carp,CJlPriTHLS COrPio,aVerage\Veight5OO g,Obtained frorn the Tado Carp Farm  

(Mie).4−Methylumbellifery−2−aCetamido−2−deoxy−β−D一郎ucopyranoside(Koch−Liめt)was  

used as the substrate of NAG.The other reagents used were obtained from the Wako   Pure Chemicalhdustries,Ltd.  

Prepara七ion of enヱyrne;The red muscle was separated from the white,rinsed and  

heldin O.25M sucrose containinglmM EDTA and O.2MKCl,pH7.4.The muscle wa   cutinto smau pieces with seissors,a pOrtion(usua11y50g)was suspendedin250mlof   the sucrose solution and disruptedin a Waring別ender(Sakuma Seisakusho Co.Ltd)  

at speed scale 2 for3O seconds.Then,the homogenatelVaS filtered through foul・layers   of gauzel\心ch had been wet 両th the sucrose solution.The filtrate(about 2L10 mt)l\・aS   dividedinto two portions.The first portion(100ml)was centrifuged at78,480Ⅹg for  

45min.The resulting supernatant,the finalsupernatant,WaS keptin a freezer at−800C   and used as the soluble NAG rich source.The second portion(140ml)was subjected  

to tissue fractionation.using thc differentialeentrifugation descridedin the prcvious   paper(UENOelaL1981).Thelysosomalfraction wasobtained by centrifuging the mito・  

cho†ldriaIfraction at 22,500x g forlO mill.The sediment was washed three times   With O.25M sucrose solution and resuspended with30mlof the solution.The suspension   was made to O.1%Triton XlOO孜nd5tOOd at40c for 30min.After centrifugation,  

the resulting supernatant,thelysosomalfraction,WaS keptin a freezer at −800C and  

used as thelysosomalNAG ricIISOurCe.  

Enヱyme aSSay:4−Methylumbelliferyl−2NaCetamido−2〜deoxy−B−D−glucopyranoside(39.Omg,  

10mM)was dissolvedinlOmlorethyleneglycolmonomethyIether.The solutiomwaskept  

in a r・efrigerator asthc stock solution of substrate.The solution was diluted with acetate  

Or Citrate buffer to O.2mM when tlSed.β−N−Acetylglucosaminidase was measured by   the fluorometric method describedin the previouspaper(UENOe〜αg.1979).The reacti。。  

mixture consisti11g Of O.1mlof the enzyme soIution and O.1mlof tiほSubstrate solution   WaSincubated at370C for60min.Afterincubation,3.3mlof50mM giycine buffer   COntaining5mM EDTA,pHlO.4,WaS added,and the released 4−methylumbelliferone   Wa5meaSured at Em460nm and Ex365nm by a spectrofluorometer(Japan Spectro−  

scopic Co.Ltd.,Type FP仰4).For the assay oflysosomalNAG,0.2M citrate buffer,  

pH4.5,WaS uSed,and O.2M acetate buffer,p‡16.0,WaS uSed for that of soluble  

NAG.  

DEAEMCe仙lose chromatography:The enzyme solution was concentrated by ultra・  

filtration to a smallvolume(about5−fold concentration).Then,an aliquot(5ml)was   applied to the column(1.0 ×12.O cm),Which hadheenequilibratedwithO.01Mphosphate  

bu洋el・eOntaininglmM EDTA,pH7.0.The enzyme was eluted witlla gradientconsisting   Of O.01M phosphate buffer containinglmM EDTA and O.3M NaCl.  

Determination of protein:Pr()teinl\・こIS dcternlincd b),tlle mCtl10d of L…Ⅷ1・(,t〃J.   

(3)

Purifieation ofβ−N−aCetylglucosaminidasein earp musele    45  

(1951).The amount of protein was expressed as bovine serum albmine.  

Results  

DEAE−Ce‖ulose chromatography of NAGin carp red muscle.  

Figurelshows the elution patterns of carp red musele NAG on DEAE−eellulose  

ehromatography.Three peaksI,ⅠIandIlIshowinghiめactivity were observedin the   lysosomalfraction and the finalsupernatant.In addition to these peaks,a peakⅣ  

】  

︵T6\叫じ莞US山箋ヨ軋山>︻トくJ揖∝︶ こ;ご∪咤   仁\訂こ      0  0   三ピロ托L  

0  

0  O  2  

0   エ0   20   50  J】0   50  

Flモ∧Cl=別1机川脚川  

F癌.1.DEAE−Cellulose chromatography ofβ−N−aCetylglucosaminidase主n carp red  

musぐ1e.  

Fraction volume was 5ml.Aetivity was determined at pH 4.5(citrate   buffer)forlysosoma)β〜N−aCetyl$lucosaminidase◎…◎and at pH6.0(acetate   buffer)for solub)cβ−N−aCet〉・1glucosaminidase● ●. The solid and dotted   lines represent the concentration of NaCland the amount of protein,reSpeC・  

tively.The experimentalconditions are deseribedin the text.  

showing high activity was onlyin the finalsupernatant.The fractions were pooled and   subjected to the following experiments.  

PH−dependence of NAG activity  

The activity was measured byincubating the reaction mixture of the enzyme and   

(4)

46   RyujiUENO,Yoshishige HoRIGUCHl,Tatsuo MoRISHIm and Taka$hiTAKAHASHl   

the substrate solution at various pH.and the resultis shoIVnin Fig.2.The optimum   activity of peaksI−m WaS Obtained at pH4.5with citrate buffer and at pH5・5with  

ハV  ・⊥   O  

X O  

つ⊥  

CJTRAT∈ BUFFER   AcETATE BUFFER  

0  nU  

︵︻モ﹈︺三︺コ芸≡﹂ 山>V﹂︼空 こ;こ︶く   ㍉ 八⁚− ・・.. 

■=■_1−i _ _■_l■_●  

5   J1   5   6   7   5  J1   5   6   7   PH   

Fig.2.Effect of pH on the activity ofβ−N−aCetylglucosaminidasein earp red mt15ele.  

lncubationiTt O.1M eitrate or acetate bufferlVaS at37■c for GO min.The   β−N−aCetylgluご05aminidase assay are describedin the text. 0:peakI,  

■:PeakIT, ▲:peaklIl. ●:Peak Ⅳ.  

acetate buffer,While that of peak Ⅳwas at pH6−7with both buffers.It was aiso   observed that acetate bufferinhibited the NAG activityin peaksI−ⅠIlmore strongly  

than eitrate buffer.  

PH stab沼ty  

As shownin F庵.3,the activity of peaksI−【‡Iwa5COnSiderably stablein the pH   ranged from3.5to7.0,Whereas that of peakⅣwasIost rapidly when the pH varied  

from 7.O tole55 thar16.0.  

Heat stabi=ty  

Figure4shows the effect of heat on the stability of NAG activity.The NAGin   peakⅣwas denatured more easilyもy heat than that of peaksI…HL Tもe residual  

activity of peaksI,ⅠⅠ,Ilt,andⅣwas88,88,83,and5%,reSpeCtively when exposed   toincubation at 500C for 30min.  

Effect of citrate and acetate   

Itis wellknown that NAGisinhibited by acetate but not citrate(Ro81NSON and   STIRLING1968).Figure5shows the effect of citrateandacetate on the activity of NAG.  

The activityin peakIwasinhibited strongly by acetate(about83%inhibition by O▲1   M at the finalconcentratiom),and thatin peakⅣshowed about13and21%inhibition   with eitrate and acetate,reSpeCtively.   

(5)

purifieation ofβ−N一哉Cetylglucosaminida$ein carp muscle  

●  ハ■▲  巨‖\  

ア. + ︳  

︳  ク  ■▲   ≡   

興X   

芸  月Y   

露〆 ︵瞥▲  

−■l ■ 

▲ :  

/   0  5  

つ;ま蒜憲 ‖岩∴誓 トト;こUq  

ハU こ1ノ  

︵蔓コ雲X望た 島根︶ こ;ごじく   −−−−−−⁚ ⁝− ⁝−−−−−︳  

20   50   〜】0   50  60   70  

TEMPERATURE(【C)   

Fig,4.Effect of heat on the stability of β−N一   息eetylglucosaminidase activity in earp   red musele.  

The enzyme 501ution was heated to the   desired temperature for30mim.Then,the   residualaet汀ity wa$mea$ured with theβ一   N−aCety】gllieOSamini血seassay describedin   the text,Incubation was at 370c for 60   mh.For the assayin peaksI−1Il,0.2   M citrate buffer.pH 4.5,WaS uSed and   O.2M aeetate buffer,pH6.0,だor thatin   peakⅣ.0:peak 王,国:pe8kII,A:peakIlI.  

◎:peak Ⅳ.  

2    5   5    G  

州  

7   8  

F厄.3.Effeet of pH on the stability of β−N−  

acetylgiucosaminidase activityin cal、P   red muscle.  

The enzyme solution was buffered to   the desired pH w油0.1M citrate山仙0.2M   pho叩hate and stood at40c for30min.  

rrhem,the residualactivity was measured   with theβ−N−aCetylglucosamjnidase assay   describedin the text.Incubation wa$at   370c for60min.For the assayiれPeaks  

I−11l,0.2M citrate buffer,pH4.5,W孔S   used andO.2丸づacetate buffer,PH6.0,Wa5   for thatin peakⅣ.0:peakI.国:Peak   II.▲:Penk 川.●:PeakⅣ.  

∧紺∧TE F;g・5・E鮎ctofcitrate and acetate on  

・′○〆○\ 

。  

0◆0\  

\  

the activity ofβ−N−aeetylgluco・  

Samiれidasein carp red musele.  

Thc cn乙yme SO)ulion containinF   Various amαunt5 0f eitrate or   aeetate was adju5ted to pH7.O   and stood at370c for30 min.  

Then,th¢reSidua】activity was   mea5ured with theβ−N−8Cetylg・  

1ucosaminida5e aSSay de5eribed   illthe text.Incubation was at   370c for60min.For【lle aSSay   in pe濾IO仙○,0.2M citrate   buffer.pH4.5,WaS uSed and O.2   M acetate buffer,pH6.0,for   that拍peak Ⅳ ◎山⑳.   

\−−−−●  

50   

︵だつ莞等質JO⁝︶と︼>︺咤  

0\  

0.05   0,エ   ロ  

FIN札 CO†iこE−√‖モ∧T】O11(M)  

J.05   8.1  

(6)

48   RyujiUENO,Yoshishige HoR【GUC恥Tatsuo MolilSHITA and TakashiTAKA‡iAS‖  

Effect of N−aCetylglucosamine and N−aCetylgaLactosamine  

Figure G shows the effect of N−aCety]glucosamine and N−aCety]galactosilnline on the   activity of carp red muscle NAG.There was stronginhibition of NAG activityin peak  

ハ∪  ︹ノ  ︵雪雲X芸旨巴こ;こU︽  

20   】0   0   20  

FINAし CONCENTRATIOI寸(mM〉  

F癌.臥 Effect of N−aCetylgiueosamine and N−aCetyl卵1actosamine on the aetiv圧y of   β−N−aCetylglucosaminidasein carp red muscle.  

Ineubation was at370C ror60min.The β−N−aeetylglucosaminidase assay   are deseribediれthe text.0:peakI,閻:peak H,Å:peak肛⑳:peak Ⅳ.  

Ⅰ−Ⅳ by N−aCetylglucosamine.N{Acetylgalactosamine alsoinhibited NAG activityin   peaksI−m but not thatin peak 王Ⅴ.  

Effect of dialysis on the activity of NAG  

Tablel.Eftect of dialysis on the activity.of501ubleβ−N≠&Cetylglueosaminidase  

SolubleNAG*2aetivity(RF*3   Before dialysis   Arterdialy   

153.0   3.6  

153.0   76.2  

2   170.4   131.7   

2    180.0   153.9   

2    195.3   162.9   

2    201.0   154.2   

7.  

×10/ml)  

Outer liquid 

1% NaC1  

1%NaCl」− 2n】M ME♯1,pH7.2  

1%NaCl−1− 2mM ME −ト 25mM E工)m,pH   1%NaCl−ト 2mM ME 山ト 50mM EDTA,pH7.  

1%NaCll− 2mM ME」血100mM El〕m,pH7.  

1%NaCl+ 2mM ME」、200ⅠⅥM EDTA,pH7,  

ー1 2−Mercaptoe症anol,*2β−N−Aeetyig】ucosaminidase,*3Relative fluorescence   

rrhe enzyme501ution of peak Ⅳ was dialyzedin a ce】lophane b絹 against various solution   

at40c overnight,Then.the residualactivity was meaBured with theβ−Nzacetylglucosaminidase    a5$ay describedin the text,For the assay,0.2M aeetate buffer,PH6.0.was used.Incubation    was at370c for60 min.   

(7)

Purification ofβ−N−aCetylg】ueosaminidasein carp mu5ele   49  

The preliminary experiment showed that払e activity of soluble NAG butlysosomal   onel㈹Slost rapidly by dialさrSis through a cellophane bag.Tablelindicates the eだect   of dialysis on soluble NAG activity with various solutions.The activity of soluble NAG   after dialysis againstl%NaCldecreased to only 2% when compared to that of the   enzyme beforeit.High recovery of soluble NAG activity was obtained by the addition of   2−merCaptOethanoland EDTA to the outerliquid.These values were50%forl%NaCI   containing2mM2−meI・Captethanola‡ld ヱ00%forl%NaC】containing2汀王M2−merCap紬・  

ethanoland 50 mM EDTA,pH 7.0.  

Discussion  

Regarding the heterogeneity of NAG,Ro8王NSON and STIRLING(1968)reported that   two types of NAG,A and B,Were foundin human serum and kidney.Both NAGs had   the optimum pH at4.5−5.O with citrate buffer and 5.5 with acetate buffer and were   inhibited abotlt8O%by20mM acetate at finaiconcentration.AIso the amino s明arS,  

N−aCetylglucosamine and N−aCetylgalactosamine,inhibited stror噌Iy the activity of both  

NAGs.However,there was a significant difference of heat stability between types A   and B.The former was more unstable than thelatter when exposed toincubation at  

500C for180min.They also suggested that types A and B of NAG were presentin  

lysosomalfraction,Whereas the supernatant contained type A only.On the other hand,  

type C of NAG was foundim human and bovine brain by eleetrophoresis(BRAIDMAN e〜  

al.1974,0vERDIJK eial.1975).This enzyme had optimum activity at pH6山7andlittle   inhihition of acetate.It was also easily denatured by heat.  

Our resultsindicate that NAGin carp red muscleis separated by DEAE−Ceuulose   chromatography jnto4co汀岬OnentS,peak5 ヱ仙Ⅳ.Itis suggested that the NAGsin   peaksI山m might beisoenzymes.This might be explained by the factthat some property   of these enzymes are very similar to each other,thatis,they have the optimum pH at   4,5and areinhibited by acetate,N一哉Cetylglucosamine,and N−aCetylgaiactosamine− On   the other hand,the property of NAGin peak Ⅳis quite different from thatin peaks  

I叫HL thatis,it has optimum pH at6叫7andisinhibited strongly by N−aCetylglucos・  

amine but not by acetate and N−aCetylgalactosamine.  

Our rla亡;laJso sho肌・that thc NjlG jn peaksl−−,川ismos由presen【in the】)・sOSOma】  

fraction and the finalsupernatant,and thatin peakⅣitis onlyin the finalsupel・natant.  

This observation agrees with the results for carp white muscle(UENO et al.1979).  

From these experiments described above,it might be concluded that carp red muscle   contains抽o major forms of NAG,1ysosomaland soluble ones.The former might be   very similar to the type B of human kidney NAG reported by RoBⅢSON and STIrtLING  

(1968).Thelatter might be the type Clike enzyme.Further workis neededto elucidate   some ana憂ogy of soiuble NAGin carp muscie with the type C of brain NAGin human   and bovine(BRAIDMAN egα乙1974,0vERDIJK e夏αJ.1975).   

(8)

50   RyuiiUENO,Yoshishige HoRIGUCHL Tatsuo MoRIS‡】l・m and TakashiTAK八日AS【il  

References   

BRAIDMAN,Ⅰ.,M.CARROLL,N.DANCE and D.RoB】NSON,ユ974.Separation a扇properties of human brain   hexosaminidase C.βf8亡んe乱ノり1ヰ3:295…301.  

CoNCH【E,).and A.J.HAY,1963.Mamrr)ali&n glycosidase.4.Theintracellular 主ocalization ofβ−  

galactosidase.α−mannOSidase.β−N−aCetylglucosam;nidase andかL−ftlCOSidasein mammalian tissues.  

Jあ査d.,87:354−361,  

LowRY,0.H‥N.J.RosEBROUGHIA.J.FARR and R.J.RAN】)ALl。,1951,Protein measurement with the   foliれpheno】reagemt.J.月foJ.Cんe猟,用3:265瞞275.  

0vERD王JK,Bリ W.M.J.VAN DER KROEF,W.A.VELTKAMP and G.J.M.HooG‖WINKEL,1975.The磨epa・  

ration of bovine brainβ−N−aCetylhexosami両dase.Abnormalgeト‖tration behaviour ofβ−N−aeetyト   D−glucosaminidase じ βi¢ぐんe軋 ん151:257榊261.  

RoBINSON,D.andJ.L.Sl、IRLING,196臥 N−Acetyトβ−g】ucosa】Ⅵinidasein】用man Spleen.劇ぎdり187:321  

…327.  

SELLINGI汎 0.Z‥ H.BEAUFAY.P.JAOU】二S,A.DoYEN and C.DE Duv】;,1960. Ti5Sue fraetionation   Studies.15.Intrace】1ular distribution and properties ofβ−N−aCety届ucosaminidase andβ−galae・  

tosidaseirlratliver.花王dり 74:450…456.  

UENO,Rり ℃Molミほ‡汀1鵠and r.TAKAHAS‖,1979.Study oflysosomalenzymesin fish m11SCle tissue一Ⅰ.  

β−N−Aeetylglueo5aminidasein carp musc】e. rhis Bull.,6:209血216(In、Japanese).  

and   198ま.Sttldy oflysosomalenzymesin fish musc】e tissue−ⅠⅠ.  

Intracellular distribution of enzymes an(‡particle properties oflysosomesin ca叩muSCle tissue.  

βお〃.J叩.ぶ0ご.ぶcg.ダfβゐ..ヰ7:207仙214(InJapa】1eSe),   

参照

関連したドキュメント

(The Elliott-Halberstam conjecture does allow one to take B = 2 in (1.39), and therefore leads to small improve- ments in Huxley’s results, which for r ≥ 2 are weaker than the result

This set will be important for the computation of an explicit estimate of the infinitesimal Kazhdan constant of Sp (2, R) in Section 3 and for the determination of an

The last sections present two simple applications showing how the EB property may be used in the contexts where it holds: in Section 7 we give an alternative proof of

Takahashi, “Strong convergence theorems for asymptotically nonexpansive semi- groups in Hilbert spaces,” Nonlinear Analysis: Theory, Methods & Applications, vol.. Takahashi,

The main purpose of the present paper is a development of the fibering method of Pohozaev [17] for the investigation of the inhomogeneous Neumann boundary value problems

Hence, in the Dirichlet-type and Neumann-type cases respectively, the sets P k used here are analogous to the sets (0, ∞) × T k+1 and (0, ∞) × S k , and we see that using the sets P

While conducting an experiment regarding fetal move- ments as a result of Pulsed Wave Doppler (PWD) ultrasound, [8] we encountered the severe artifacts in the acquired image2.

Examples of directly refinable modules are semisimple modules, hollow modules [1], dual continuous modules [2], and strongly supplemented modules [6].. In [B, lroposition