THE 定
青木 一洋
京都大学大学院医学研究
時空間情報 ン 点
第4 + 5回定 生物学 会 ュ
今日 容
• ン
• 生化学的 定
– ン 質濃度 簡単
– 散定数
– 解 定数
– 反応速度定数 しい
• 他 定 例
ン 質濃度
C [M]
解 定数&相互作用'
K
d[M]
酵素反応速度定数
k
cat[/M/sec] K
m[M]
散定数
D [m
2/sec]
生化学的
ン 質濃度 / 細胞
M & ' = mol/L
molecules/L/cell
単 :
/細胞あ 分子数
& 10^3 ~ 10^6 個'
/細胞あ 体積
&~ pL '
少 い分子 1~10 nM
多い分子 1~10 mM
C [M]
ン 質濃度
生化学的 > ン 質濃度
分子数 / 細胞 測定法 -1
1. ン ン
質 精製
2. 濃度 測定& Bradford, BSA
準 CBB 染色'
3. 細胞 数 測定し& Cell
counter ' 決 細胞数
細胞溶解液 準備
4. 2, 3 流し densitometry
定
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S1
ン 細胞溶解液
結構 しい
生化学的 > ン 質濃度>分子数 測定
ン 質 精製 い場合
1. ン Tag ン
質 精製
2. Tag 融合し ン 質
細胞 発現 細胞溶
解液 作
3. 段 定
Aoki, et al., JCB, 2007, Supplementary Figure S2
GST
5Myc
YFP
3HA
FLAG
/段 目
融合 ン
質 数 定
0段 目
定 し 融合
ン 質 在性
ン 質濃度 逆算
生化学的 > ン 質濃度>分子数 測定
余談: ン酸化 定
生化学的 > ン 質濃度>分子数 測定
1. ン
2. 100% ン酸化 Reference 作
3. Phos-tag ( 述 )
ン酸化抗体 IP し
ン
& 100% ン酸化'
Fujioka et al., JBC, 2006
Terai et al., EMBO Rep, 2006
細胞 体積 定
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S1
養細胞 ン し 球 し 計算
細胞体 + 核 核
3
3
4 r
Volume
共焦点 測定し あ 変わ
生化学的 > ン 質濃度>体積 測定
ン 質 濃度測定あ
• Western blotting 付
– ン
– 当
– 抗体& polyclonal or monoclonal '
• 体積
– 細胞
細 い 気 し い!
有効数 一桁 い 限界
生化学的 > ン 質濃度
分子数 知 面白い
0.001 0.01 0.1 1 10
Huang et al.
Bhalla et al.
Schoeberl et al.
Sasagawa et al.
Brightman et al.
Hatakeyama et al.
ン 質濃度
ン 質濃度 [ [ m m M] M]
Ras Ras
MAPKKK
MAPKKK
MAPKK
MAPKK
MAPK MAPK
々
生化学的 > ン 質濃度
ン 将来展望
• 在性 分子 認識 抗体 必要 時間
比較的簡単
質 分析 絶対定
• 大多数 細胞 平均値 い
TALEN CRISPR /細胞 在
性分子 可視化
生化学的 > ン 質濃度
ン 質濃度
C [M]
解 定数&相互作用'
K
d[M]
酵素反応速度定数
k
cat[/M/sec] K
m[M]
散定数
D [m
2/sec]
生化学的
生化学的 > 散速度
散定数
散定数
D [m
2/sec]
散定数
散 早い分子&細胞質' 1~10 mm 2 /sec
養細胞 あ ば 数 端 端 動
従 細胞 反応 多 活性化 速&× 散 速'
散 遅い分子&細胞膜' 0.01~0.1 mm 2 /sec
核 核外
移行速度
k
imp, k
exp[/sec]
生化学的 > 散速度< 散定数
Stokes-Einstein 式
k
BD
R
T
D k B
6
T
R
散速度 [m
2/sec]
ン定数 [m
2g sec
-2K
-1]
絶対温度 [K]
粘性係数 [g/m/sec]
流体力学的粒子半径 [m]
ば ば 液体& 大' 散遅い
い分子& R 大' 散遅い & R 分子 M 1/3 乗'
温度 あ 関係 い& 0~30 ℃'
生化学的 > 散速度< 散定数 Stokes-Einstein
う 測定 :蛍光 ン
• FRAP & fluorescence recovery after photo-
bleaching 褪色 蛍光回復法' , FDAP
(fluorescence decay after photo-activation 光
活性化 蛍光減衰法 )
– 散速度 い分子 測定 適し い
• FCS & Fluorescence correlation spectroscopy 蛍
光相関分光法'
– 散速度 大 い分子 測定 適し い
生化学的 > 散速度<測定方法
FRAP 褪色 蛍光回復
J. Lippincott-Schwartz, Nature Rev Mol Cell Biol 2 (2001) 444
生細胞
ン
固定細胞
生化学的 > 散速度<FRAP
Photo-bleaching by CLSM
Venus-KRasCT
形質膜 ン
生化学的 > 散速度<FRAP
光活性化型蛍光 ン 質
Lukyanov KA, et al., 2005, Nat. Rev. Mol. Cell Biol.
生化学的 > 散速度<PA-FPs
Diffusion of PA-GFP in a cell and in PBS
生化学的 > 散速度<PA-FPs
FRAP 散速度 定
J. Lippincott-Schwartz, Nature Rev Mol Cell Biol 2 (2001) 444
時定数 散時間 t
D
生化学的 > 散速度<FRAP 散速度 定
& Non-linear ' fitting う =
生化学的 > 散定数>Fitting 方法
Excel Solver 最適化 簡単
実験 人 覚え 損 い
Kemmer and Kellar, Nat. Protoc., 2010, 5:267-81. PMID 20134427
論文参照し ↓
& 次元 散 ' 散速度 算出
D
D 4 t
2
Axelrod, et al., 1976, 16, 1055, Biophys. J.
D
t
D散速度 [m
2/sec]
半径 [m]
散時間 [sec]
あ 次元 散 領域 褪色
適応 理論
• 細胞膜分子 散& 次元' 使え
• 細胞質分子 散 式 使わ い い
い 細胞形状 影響 ン し い
生化学的 > 散速度>FRAP> 散速度 算出方法
Time
Signal
Time
Signal
早い 散 早い揺
遅い 散 遅い揺
蛍光相関分光法 FCS
http://www.mpip-mainz.mpg.de/62430/Fluorescence_Correlation_Spectroscopy
共焦点 顕微鏡
生化学的 > 散速度>FCS
自己相関関数
Time
Signal
Time
Signal
早い揺
遅い揺
自己相関関数
2t
F
t
F
t
G F
t
t
t F t F t
F
F t 平均値
Lag time Gauto()
時間 t
い相関
残 い
自己相関関数 自力 求 Matlab R 一瞬 計算可能
生化学的 > 散速度>FCS>自己相関関数
Time
Signal
Lag time Gauto()
Time
Signal
Lag time Gauto()
早い 散 早い揺 い 散時間
遅い 散 遅い揺 大 い 散時間
蛍光相関分光法 FCS
自己相関関数
t
D散時間
生化学的 > 散速度>FCS>自己相関関数
3D 単純 散
D
D
k
G
G t t t 1 1
2 t t
1
1
0 1
実効体積&共焦点体積' [m
3]
V C
G
eff
0 1
t
Dk
z xy
V
eff
2
2
3C 蛍光分子濃度 [molecules/m
3]
散時間 [sec]
構造定数& structure paraemter '
= Z
0/r
0~ 2-5
共焦点体積 中
蛍光分子数
D
D
xy t
4
2
z2
xy2
散速度 式
大体 ~ fL い 細胞 体積 ~ pL
~ 0.5 mm
~ 2.0 mm
生化学的 > 散速度>FCS>1D単純 散
Rhodamine 6G ω, k 求
D
D
xy t
4
2
6G
280
D
Rhod[ mm
2/sec]
水溶液中 Rhodamine 6G 散定数& 20 ℃'
分 い
0.
1. 水溶液中 Rhodamine 6G FCS 測定
Lag time Gauto()
2. 得 自己相関関数 1 D 単純 散 ン し t
D, k 求
3. 散速度 式 代入し
xy求
生化学的 > 散速度>FCS>Rhodamine 6G ョン
FCS 実例
細胞 環境 水 比べ 2-3 倍粘性 高い
-0.2 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2
0.01 0.1 1 10 100
Delay time (ms)
Normalized G(0)
実験値 Fitting 実験値 Fitting
D=19.6 mm
2/s
D=7.7 mm
2/s
PBS
細胞 GST-GFP: 45 kD
R
T
D k
B
6
粘性
生化学的 > 散速度>FCS>FCS実例
FRAP vs FCS
FRAP FCS
z2
xy2
~ 0.5 mm
~ 2.0 mm
xy大 い& ~ 1-10 mm '
xyい& ~ 0.5 mm '
共焦点 顕微鏡 あ ば
共焦点 顕微鏡+専用 装置
必要
~ msec
~ msec
時間分解能 時間分解能
散現象 散現象
生化学的 > 散速度>FRAP vs FCS
異常 散 分子混 合い
t
D
D
0R
T
D k
B
6
粘性
&
物理定数'
散 散
McGuffee SR, Elcock AH.
PLoS Comput Biol. 2010
Time t1 t2 t3
生化学的 > 散速度>異常 散
FCS 異常 散 定
Banks et al., 2004, 60(2), 131-139.
t G t t
D k t t
D
G 1 1
2
1
1
0 1
t
D
D
0Anomalous exponents
相関
隙間 早 散
相関
あ
混 合い分子 動
生化学的 > 散速度>FCS 異常 散 定
(1) YFP-ERK2-FKBP
(2) H1-FRB
共焦点顕微鏡 ;
HeLa 細胞
(1) YFP-ERK2-FKBP
(2) FRB-NES
(1) YFP-MEK1-FKBP
(2) H1-FRB
核 移行速度 核外移行速度
生化学的 > 散速度<核 核外移行速度 定
核 核外移行速度 定
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S3
ン 将来展望
• 顕微鏡 高い 顕微鏡 えあ ば 蛍光 ン
質 測定 比較的簡単
• 細胞質 局在 う ン 質 散
速度 大 い 一瞬 細胞 端
端 動
• 細胞膜 細胞 局在 う
ン 質 関し 散速度 測定
面白い 見え 思わ
生化学的 > 散速度
ン 質濃度
C [M]
解 定数&相互作用'
K
d[M]
酵素反応速度定数
k
cat[/M/sec] V
max[M]
散定数
D [m
2/sec]
生化学的
生化学的 >解 定数
ン 質相互作用 解 定数
解 定数&相互作用'
K
d[M]
[/sec]
f b
d
k
K k
[/M/sec] [M]
単
ば い 強い結合力
~ nM: 強い
~ mM: あ 強 い
生化学的 >解 定数
平衡状態近似 Kd 計算式
k A B k AB 0
dt
A
d
b f
k A B k AB 0
dt
B
d
b f
k A B k AB 0
dt
AB
d
b f
A AB B
k K
k
d f
b
辺
平衡状態
[A], [B]
結合し い い
A, B 濃度
生化学的 >解 定数
平衡状態近似 Kd 計算式
AB B
K
d A
free free
d
free
K
B
AB
totalA
AB
AB totalA K B B
d
[B
free]
K
d0
[AB]
[A
total]
[A
total]
2
生化学的 >解 定数
Scatchard plot 法
http://bsd.neuroinf.jp/wiki/ 結合定数
生化学的 >解 定数
ン 質間相互作用 検出法
• In vitro
– In vitro 結合
– 表面 ン共鳴法
• In vivo (in cellulo?)
– 蛍光共鳴 移動 FRET
– 蛍光相関分光法 FCCS
– 分子蛍光相補 BiFC
– …
生化学的 >解 定数>
In vitro 結合
1. 結合 ン 質 精製 &結構 しい'
2. ュ 混 共沈
3. Western blotting 定
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
生化学的 >解 定数>In vitro>In vitro結合
表面 ン共鳴法 BIACORE
1. 結合 ン 質 精製 &結構 しい'
2. 片方 固定
3. う片方 ン 質 流し RU & Response unit ' 測定
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
:結合速度定数& kf ' 解 速度定数& kb ' 測定
生化学的 >解 定数>In vitro>表面 ン共鳴法
In vitro In vivo 違い
in vitro
in vivo
ive
0.5 1
0
in vitro Kd
[AB]/[Total B]
[Total A] - [AB]
0.5 1
0
in vivo Kd
[Total A] - [AB]
[AB]/[Total B]
A + B AB
C AC
A + B AB +
D BD
+
0.5 1
0
in vivo Kd
[Total A] - [AB]
[AB]/[Total B]
A + B AB
In vivo Kd
> In vitro Kd
In vivo Kd
< In vitro Kd
競合阻害
分子混雑
生化学的 >解 定数>In vitro in vivo 違い
蛍光共鳴 移動 FRET
B
k
fk
bA + A B
FRET
1. 細胞 CFP, YFP 融合 ン 質 数
2. FRET 補正& Cross-excitation, Bleed-
through, FRET 効率 Quantum efficiency)
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET
HeLa/CFP-MEK1
9.2 x 10
6CFP / cell
蛍光 ン 発現細胞 ン 取
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>細胞 蛍光 ン 質 数
4.0E+11
Recombinant tag protein (molecules)
2.0E+11 1.0E+11 5.0E+10 5.0E+4 2.5E+4 1.25E+4
Blot: anti-GFP
(MBL)
HeLa/ m1C-xMEK1
(cells)
50 75 KD
1. 蛍光 ン 質遺伝子
入 & / ン
ン ン 線形 DNA
'
2. ン ン &限
界希釈法'
3. 取 ン 対し
蛍光 ン 質 発現 定
4. ン 条件 固定し
蛍光 ン 数 / 蛍光強度質
算出
蛍光 ン 発現細胞 ン 取
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>細胞 蛍光 ン 質 数
1. 蛍光 ン 質遺伝子
入 & / ン
ン ン 線形 DNA
'
2. ン ン &限
界希釈法'
3. 取 ン 対し
蛍光 ン 質 発現 定
4. ン 条件 固定し
蛍光 ン 数 / 蛍光強度質
算出
HeLa/mVenus-MEK1
6.2 x 10 6 YFP / cell
50 75
KD 4.0E+11
Recombinant tag protein (molecules)
2.0E+11 1.0E+11 5.0E+10 5.0E+4 2.5E+4 1.25E+4
Blot: anti-GFP
(MBL)
HeLa/ m1V-xMEK1
(cells)
CFP beads
f = 100 nm)
9.2 x 10
6[CFP / cell]
6.9 x 10
4[CFP / bead]
7.2 x 10
4[intensity / cell]
Microscopy: IX-71
x60, ND 0, bin 8, Glass Dichro, c-c 100 ms
130 [CFP / intensity]
5.4 x 10
2[intensity / bead]
/
=
130 [CFP / intensity]
x
=
ョン用
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>細胞 蛍光 ン 質 数
HeLa/
mVenus-MEK1
一度 ョンし し えば 実験 加え 蛍光強度 測
定 ば細胞 蛍光 ン 質分子数 分
YFP beads
f = 5 mm)
6.2 x 10
6[YFP / cell]
3.9 x 10
4[YFP / bead]
2.8 x 10
5[intensity / cell]
Microscopy: IX-71
x60, ND 0, bin 8, Glass Dichro, y-y 100 ms
22 [YFP / intensity]
1.8 x 10
4[intensity / bead]
/
=
22 [YFP / intensity]
x
=
ョン用
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>細胞 蛍光 ン 質 数
HeLa/
mCFP-MEK1
一度 ョンし し えば 実験 加え 蛍光強度 測
定 ば細胞 蛍光 ン 質分子数 分
分子間 FRET 必要 補正
350 400 450 500 550 600
0
50
100
波長 (nm)
励起 し 蛍光 (%)
350 400 450 500 550 600
0
50
100
波長 (nm)
440
±
20
480
±
30
535
±
26
440
±
20
505
±
10
535
±
26
CFP Bleed Through YFP Cross Excitation
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>Cross-excitation, Bleed-through 補正
Bleed Through, Cross Excitation 補正
y = 0.0887x R 2 = 0.9991
0.E+00 1.E+05 2.E+05 3.E+05
0.E+00 1.E+06 2.E+06 3.E+06
Ex. 505 / Em. 535
Ex . 440 / Em. 535
y = 0.5462x R 2 = 1
0.E+00 2.E+05 4.E+05 6.E+05
0.E+00 5.E+05 1.E+06
Ex. 440 / Em. 480
Ex . 440 / Em. 535
CFP 54.6% 蛍光
FRET ン
YFP 8.9% 蛍光
FRET ン
注意: 顕微鏡 値 異 !
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>Cross-excitation, Bleed-through 補正
Corrected FRET (cFRET) 計算
cFRET = FRET – (Bleed Through) – (Cross Excitation)
= FRET – 54.6 x CFP – 8.9 x YFP
350 400 450 500 550 600
波長 (nm)
本来の FRET シグナル
cross-excitation
bleed-through
蛍光強度 (% )
cFRET cFRET
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>Cross-excitation, Bleed-through 補正
MEK1WT-m1v + m1c-ERK2WT
m1v-MEKWT + m1c-ERK2WT
FRET
ch.
YFP
ch.
CFP
ch. cFRET
- 0.089* - 0.55* =
C - Y Y - Y C - C
YFP-MEK1
CFP-ERK2
CFP-ERK2
MEK1-YFP
Epi;
HeLa cell
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>Cross-excitation, Bleed-through 補正
最適 蛍光 ン 質
Before
photo-bleach
After
photo-bleach
YFP-MEK1
( 大過剰 )
CFP-ERK2
( 発現 少 )
0 20 40 60 80 100 120
Before PB After PB )o% (ecnecsreluN fPF Ydelizarmo YFP
90 100 110 120 130
Before PB After PB )o% (ecnecsreluN fPF Cdelizarmo CFP
FRET efficiency = 15.6 ± 2.6 %
Epi;
HeLa (Italy) cell
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>最大 FRET効率 算出
最大 FRET 効率 算出
Q
e16 %
1. 各細胞 [YFP-MEK1]
total, [CFP-ERK2]
total,
[cFRET] 蛍光 算出
2. [MEK1-ERK2] 以 計算式 算出
[MEK1-ERK2] = [cFRET] *
FRET
effi.1 1
*
MEK
ERK
CFP
fluorescence
100 84 %
YFP
excitation
16 %
YFP
fluorescence
10 %
Q
e~ 0.6
3. [ERK2]
free以 計算式
[ERK2]
free= [ERK2]
total– [MEK1-ERK2]
4. ン Kd 求
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>実際 Kd測定 手順
実際 解析手順
YFP ch. CFP ch. cFRET cFRET/YFP
YFP- :
MEK1
CFP-
ERK2
:
9 1
:
3 1
:
1 1
:
1 3
:
1 9
FRET MEK-ERK 結合 可視化
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>生
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2
0 10 20 30 40
Free ERK (uM)
Bound MEK/Total MEK
Fitting M:E=1:9 M:E=1:3 M:E=1:1 M:E=3:1 M:E=9:1
K d = 2.0 ± 0.2 mM
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2
0 2 4 6 8 10
Free ERK (uM)
Bound MEK/Total MEK
Fitting M:E=1:9 M:E=1:3 M:E=1:1 M:E=3:1 M:E=9:1
Fitting Kd 算出
生化学的 >解 定数>in vivo>FRET>Fitting
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
蛍光相互相関分光法 Kd 測定
生化学的 >解 定数>in vivo>FCCS
分子間 FRET Kd 測定 い
蛍光相関分光法& FCS ' 蛍光相互相関分光法& FCCS '
細胞 Kd 測定法 開発
解 定数定 : ン 将来展望
• In vitro ン 精製 面倒 In vivo 定
的 蛍光 ン 質 測定 面倒
FCS, FCCS 改善 網羅的 Kd
測定 現時点 しい
• In vivo 場合 細胞質 結合 測定
可能
形質膜 分子 Kd 測定 今
課題
生化学的 >解 定数
ン 質濃度
C [M]
解 定数&相互作用'
K
d[M]
酵素反応速度定数
k
cat[/M/sec] K
m[M]
散定数
D [m
2/sec]
生化学的
生化学的 >酵素反応速度定数
- ン ン
酵素反応速度定数
k
cat[/M/sec] K
m[M]
k b
k f k
cat
v : velocity of reaction
[S] : substrate concentration
K
m: Michaealis constant
V
max: Maximal velocity
S
K
S
E
v k
m cat
d f
cat b
m
K
k
k
K k ~
E
k
V
max
cat生化学的 >酵素反応速度定数> ン ン
う 測定
1. 酵素 質 ン 質 精製
2. 試験管 反応 初速度 測定
3. Lineweaver-Burke plot K m V max 求
In vitro
maxmax 0
1
1
1
V
S
V
K
v
m
ン ン式
線形化し い
生化学的 >酵素反応速度定数>測定法
し し
非線形 ン 求 い い い=
生化学的 >酵素反応速度定数>測定法
実例 : MEK ERK ン酸化速度
pY
ERK
pT pY
pT pY
ERK
ERK
MEK
Enzyme
MEK1
ERK2
Substrate
ATP
Mg
2+NaCl,
Tris Buffer,
etc,,,
室温
Stop kinase
reaction by adding
2 x sample buffer
Incubate
生化学的 >酵素反応速度定数>実例
ン酸化 分
P
P
P
P 生化学的 >酵素反応速度定数>Phos-tag
MEK in vitro ERK ン酸化
Blot: anti-ERK1/2
In vitro kinase reaction
GST-xERK2 K57R
12His-Flag- xMEK1-SDSE
+
0 5 sec 1 min 3 min 5 min 10 min 30 min 60 min10 sec 30 sec KD
47 93 120
anti-pTpY- ERK1/2
Red: ERK Green: pTpY-ERK
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
生化学的 >酵素反応速度定数>MEK in vitro ERK ン酸化
何割 ン酸化 入
定 的 分
MEK in vitro ERK ン酸化
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
生化学的 >酵素反応速度定数>MEK in vitro ERK ン酸化
2uM 1uM 0.5uM
0.25uM 0.125uM 0.0625uM
0 0.5 1 1.5
0 200 400 600
Time after incubation (sec)
ERK concentration (uM)
0 0.2 0.4 0.6 0.8
0 200 400 600
Time after incubation (sec)
ERK concentration (uM)
0 0.1 0.2 0.3 0.4
0 200 400 600
Time after incubation (sec)
ERK concentration (uM)
0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25
0 200 400 600
Time after incubation (sec)
ERK concentration (uM)
0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12
0 200 400 600
Time after incubation (sec)
ERK concentration (uM)
0 0.01 0.02 0.03 0.04 0.05 0.06
0 200 400 600
Time after incubation (sec)
ERK concentration (uM)
MEK ERK ン酸化 初速度
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
生化学的 >酵素反応速度定数>MEK in vitro ERK ン酸化
MEK ERK ン酸化 初速度
Linear?
0 0.005 0.01 0.015 0.02
0 0.5 1.0 1.5
GST-ERK [uM] Initial velocity of pY-phosphorylation [uM/sec]
v / [S]
ERK ン ン酸化 初速度
First-order
kinetics
Zero-order
kinetics
[S] >> K
mv = const.
場合 Fitting 信頼 Km 求 い
生化学的 >酵素反応速度定数>MEK in vitro ERK ン酸化
数式的 解釈
First-order kinetics
[S] << K
mMichaelis-Menten 式
First-order
kinetics
Zero-order
kinetics
[S] >> K
mv = const.
v ∝ [S]
[S] << K
m
S
K
S
E
v k
m cat
E S
K
v k
m
~
cat Zer-order kinetics
[S] >> K
m E
k
v ~
cat生化学的 >酵素反応速度定数>/次近似
線形化し 逐次反応式
= - k
1* [ERK]
dt
d[ERK]
dt
d[pY-ERK]
= k
1* [ERK] – k
2* [pY-ERK]
dt
d[pTpY-ERK]
= k
2* [pY-ERK]
pY
ERK
pT pY
pT pY
ERK
ERK
MEK
k
1k
2 場合 解析解 得
生化学的 >酵素反応速度定数>/次近似 逐次反応
ン
k
2= 0.0088 [/sec]
ERK
pY-ERK
pTpY-ERK
Experiments
ERK
pY-ERK
pTpY-ERK
Fitting
k
1= 0.016 [/sec]
生化学的 >酵素反応速度定数>/次近似 逐次反応
余談:定 し わ
Nick I. Markevich, Jan B. Hoek, and Boris N. Kholodenko. J. Cell Biol. 2004, 164, (3), 353
K
m_1k
cat_1K
m_2k
cat_2>
<<
々 結果
Kholodenko 結果
K
m_1k
cat_1K
m_2k
cat_2生化学的 >酵素反応速度定数>余談
In vivo =
ン酸化 い MEK 脱 ン酸化速度
仮定/: in vivo K
m
S 十分大 い
仮定 2 :脱 ン酸化酵素活性 一定
生化学的 >酵素反応速度定数>In vivo
Aoki, et al., PNAS, 2011, Supplementary Figure S2
簡便 : FRET い
FRET
Linker
CF
P
475 nm
433 nm
433 nm 530 nm
Y F
P
Ligand
domainSensor
domaink
cat[/M/sec]
K
m[M]
生化学的 >酵素反応速度定数>FRET
/分子型&分子 ' FRET ン
• 高感度 画像補正 必要 い 遺伝子 入 簡便
/分子型 FRET ン
• 開発 最適化 ン
FRET
Linker
CF
P
475 nm
433 nm
433 nm 530 nm
Y F
P
Ligand
domainSensor
domain/分子型 FRET ン
生化学的 >酵素反応速度定数>FRET
1. 間 距 2. 角度
: 遷移 ン
FRET 寄与 因子:距 角度
生化学的 >酵素反応速度定数>FRET
旧 ョン
FRET ン
新 ョン
FRET ン
戦略 : 完全 距 依 型 一分子型 FRET
ン 作製 最適化
(~5 aa)
: 遷移 ン
距 依 型 ン 開発
Komatsu, et al., MBoC, 2011
生化学的 >酵素反応速度定数>FRET
Sensor
domain
Ligand
domain
SECFP
YPet
Localization
signal
EV linker
Optional
domain
Extension of enhanced visualization by evading extra-FRET
Eevee :
• 体化し い蛍光 ン 質
• 最適 ン 長
Komatsu, et al., MBoC, 2011
FRET ン 合理的骨格
生化学的 >酵素反応速度定数>FRET
FRET ン 効率的 開発
Komatsu, et al., MBoC, 2011
生化学的 >酵素反応速度定数>FRET
ERK PKA JNK
RSK S6K PKC Akt
EGFR
Komatsu, et al., MBoC, 2011
FRET ン 効率的 開発
生化学的 >酵素反応速度定数>FRET
FRET 在性分子 相関
Aoki, et al., Mol. Cell, 2013, Supplementary Figure S1
酵素反応: ン 将来展望
• In vitro ン 精製 面倒 in
vitro 条件 ン 質 精製度 依
In vivo 測定 方 生理的
わ
FRET 改善 網羅的 酵素
反応速度 測定 現時点 しい
ン酸化 質 分析 絶対定
手法 開発 必要
生化学的 >酵素反応速度定数
今日 容
• ン
• 生化学的 定
– ン 質濃度
– 散定数
– 解 定数
– 反応速度定数
• 他 定 例
生化学的 > 他 定 例
TarckMate Tracking
http://goo.gl/N3OaBW
• Fiji (ImageJ) plugin TrackMate
• 日本語 ュ 作 し ↓
• Tracking
Jaqaman, Nature Methods,
2008 LAP Tracker 使え
• Split, Merge, Gap close 対
応
• Tracking 結果 CSV, Text 出
力可能
Tracking
他 定 例
• ば 度合い 比較し い
• ン 分布
• 振動系=興奮系=単 揺 = 知 い
• 細胞運動 定 化し い
統計 知識 時系列解析 数理生物 知識
あ ば定 的 示 多い
適当 統計 ば自分 定 用
index 作 し う
使え う 統計
平均 m :
標準偏差 SD ;分散 1/2: ば 広
男性: 60 ± 12 kg, 女性: 40 ± 10 kg
変動係数 CV = m /SD
女性 う 男性 CV 大 い
生物 多 平均 大 ば標準
偏差 大
ョ 標準偏差;平均 1/2
使え う 統計 知識
• 変換 自己相関
– 時系列 周期的 信号 定し
使え
S f e df
R t
j2ft f R t e
td t
S
j2 fン ン 定理
自己相関
変換
実験 人 ういう 知 い 今 Matlab R 簡単 計算
し 分 ば &次 演者 ' 聞 ば い
X 軸 時間 t
X 軸 周波数 f
細胞運動関係
生化学的 > 他 定 例
HT-1080 細胞
Rac1
FRET
ン
Cdc42
FRET
ン
3.4
2.1
活性
高い
い
Kunida, et al., JCS, 2012
細胞膜伸展速度 定
Kunida, et al., JCS, 2012
自己相関関数 ン抽出
Maeda et al., PLoS One, 2008; Kunida, et al., JCS, 2012
2
,
,
, ,
t
x
F
t
t
x
x
F
t
x
t F
x
ACF
x t F x t F x t
F , , ,
F x , t 平均値
自己相関関数 ン抽出
ΔTime (min) Oscillatory
1.0
-0.5
0 60
-60 0 100
-100Δ
Window no. Δ Window no. Δ Window no.
Auto-correlation coefficient Auto-correlation coefficient Auto-correlation coefficient Auto-correlation coefficient Wave-like
1.0
-0.5
0 60
-60 0 100
-100Δ
Window no.
ΔTime (min)
Non-classifiable
1.0
-0.5
0 60
-60 0 100
-100
ΔTime (min) Directional
1.0
-0.5
0 60
-60 0 100
-100
ΔTime (min)
42% 6% 32% 20%
相互相関関数 相関解析
細胞周囲
膜伸展速度&
関数
mm/minF(x,t)
'関数 G(x,t+ t)
細胞周囲
細胞膜 伸展速度
Rac1 分子活性
時間&分' 時間&分'
,
2 12 ,
2 21,
, ,
t
x
G
t
x
F
t
t
x
x
G
t
x
t F
x
CCF
x t F x t F x t
F , , ,
F x , t 平均値
相互相関関数 相関解析
細胞周囲
膜伸展速度&
関数
mm/minF(x,t)
'関数 G(x,t+ t)
細胞周囲
細胞膜 伸展速度
Rac1 分子活性
時間&分' 時間&分'
- 2 分 !
!?
進展
Rac1, Cdc42
活性化
時間遅
t
Rac1, Cdc42
活性化
進展
時間遅
2 分
Tsukada et al., PLoS Comput. Biol., 2008; Kunida et al., JCS, 2012